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                  <text>ISSN: 2007-1167

No. 31

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE NUEVO LEÓN

Agosto 2025

�Pág.

®

Una publicación de la Universidad Autónoma de Nuevo León
Dr. Med. Santos Guzmán López
Rector
Dr. Mario Alberto Garza Castillo
Secretario General
Dr. Jaime Arturo Castillo Elizondo
Secretario Académico
Dr. José Javier Villarreal Álvarez Tostado
Secretario de Extensión y Cultura
Mtro. Mario Emilio Gutierrez Caballero
Abogado General de la UANL
Lic. Antonio Jesús Ramos Revillas
Director de Editorial Universitaria
Dra. Diana Reséndez Pérez
Coordinadora de la Facultad de Ciencias Biológicas
Dr. Marco Antonio Alvarado Vázquez
Dr. Sergio Manuel Salcedo Martínez
Editores Responsables
Dra. Diana Elena Aguirre Cavazos
Editora Invitada

Contenido

Editorial

3

Personajes

Dra. Lynn Margulis

4

Divulgación científica
Vainilla, la Orquídea que Nació del Amor y
Floreció con la Cultura

7

Licófitas,
Joyas Ocultas del Mundo Vegetal

11

Agaves en México:
Una planta Milenaria y Patrimonio Cultural

31

Fitohormonas

36

Dr. Jorge Luis Hernández Piñero
Circulación y Difusión
PLANTA, Año 20, Nº 31, Agosto 2025. Es una publicación semestral editada por la Universidad Autónoma de Nuevo León, a través
de la Facultad de Ciencias Biológicas. Domicilio de la publicación:
Ave. Pedro de Alba y Manuel Barragán, Cd. Universitaria, San Nicolás de los Garza, Nuevo León, México, C.P. 66451. Teléfono: +
52 81 83294110 ext. 6456. Fax: + 52 81 83294110 ext. 6456.
Editores responsables: Dr. Marco Antonio Alvarado Vázquez y Dr.
Sergio Manuel Salcedo Martínez. Reserva de derechos al uso exclusivo: 04-2022-110813543200-102. ISSN 2007-1167, ambos
otorgados por el Instituto Nacional de Derecho de Autor. Licitud de
título y contenido No. 14,926, otorgado por la Comisión Calificadora de Publicaciones y Revistas Ilustradas de la Secretaría de Gobernación. Registro de marca ante el Instituto Mexicano de la Propiedad Industrial: En trámite. Impresa por: Imprenta Universitaria, Cd. Universitaria, San Nicolás de los Garza, Nuevo León, México, C.P. 66455. Fecha de terminación de impresión: 29 de agosto
de 2025, Tiraje: 250 ejemplares. Distribuido por: Universidad Autónoma de Nuevo León a través de la Facultad de Ciencias Biológicas. Domicilio de la publicación: Ave. Pedro de Alba y Manuel Barragán, Cd. Universitaria, San Nicolás de los Garza, Nuevo León,
México, C.P. 66455. Las opiniones y contenidos expresados en los
artículos son responsabilidad exclusiva de los autores.
Esta publicación en su integridad y los derechos contenidos en
ella, están protegidos por la Ley Federal de Derecho de Autor y la
Ley Federal de Protección a la Propiedad Industrial por lo que no
podrá ser reproducida con fines comerciales sin autorización del
editor. Asimismo, queda prohibido cualquier uso sobre esta publicación, sea total o parcialmente, con fines de entrenamiento de
cualquier clase de inteligencia artificial, minería de datos y textos
incluyendo, pero no limitado a la generación de publicación de
obras derivadas o contenidos basados total o parcialmente en esta
publicación y cualquiera de sus partes pertenecientes a la Universidad Autónoma de Nuevo León, a través de la Dependencia Universitaria que corresponden. Las violaciones a estas disposiciones
constituyen una infracción en materia de comercio, derechos de
autor y un delito.

Impreso en México
Todos los derechos reservados
® Copyright 2025
planta.fcb@gmail.com

2

Solo Ciencia
Efecto de Florus© y Boost© en la Productividad y
Calidad del Cultivo de Naranja Valencia

40

Selaginella subg. Lepidophyllae, Descripción y
Clave para su Identificación

46

Efecto de los Bioestimulantes Radix© y Optimus© a Base de Microalgas sobre el Rendimiento del Cultivo de Caña de Azúcar
Morfoanatomía foliar del huizache Vachellia farnesiana (L.) Wright y Arn.

Evaluación Agronómica de Florus© y Boost© en
la Productividad y Calidad Fitosanitaria de Papaya (Carica papaya L.)

53

59

66

Imagen portada: flor de la planta de vainilla. Fotografía de
Santiago Méndez Pérez.
Imagen contraportada: flores de Erythrostemon mexicanus.
Fotografía de Ángel Miguel Narváez Rodríguez.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�La Importancia de los Congresos de Sociedades Académicas o Profesionales en la
Formación de los Estudiantes

A
Editorial

l participar como asistente a algún congreso se tiene acceso de primera mano tanto a
material exclusivo que muchas veces no está disponible por otros canales como a los
últimos avances y tendencias del área, lo que permite actualizar nuestro conocimiento y puede inspirar nuevas ideas o generar nuevas líneas de trabajo o investigación.
Además, estos foros dan la oportunidad de interactuar directamente con ponentes expertos en
el área, permitiendo el conocerlos, preguntarles y debatir con ellos y otros asistentes, lo que
resulta en la posibilidad de conocer colegas, ampliar nuestra red de contactos profesionales,
establecer nuevos vínculos y por qué no, abrir oportunidades laborales o académicas. Por si
fuera poco, muchos congresos dan certificados de participación, con los que se avala la asistencia y el aprendizaje de los asistentes y estos tienen valor en nuestra formación continua.
En cuanto a los ponentes, los congresos les ofrecen un canal efectivo para divulgar avances
antes de su publicación formal y su participación por un lado les da visibilidad y prestigio profesional dentro de la comunidad académica y por otro les permite mejorar sus habilidades de
oratoria, síntesis y capacidad para presentar ideas de forma clara y atractiva.
Además, les permite que su presentación reciba una retroalimentación especializada gracias a
las opiniones, críticas constructivas y sugerencias de colegas, lo cual enriquece su trabajo o
investigación y muchas veces les brinda la oportunidad de publicarlo en memorias o revistas
asociadas.
Pero ¿qué ventajas ofrecen los congresos para un profesional que ya publica en revistas reconocidas de alto impacto, que ya posee cierto renombre y pertenece a una red de profesionales
con las que tiene contacto en tiempo real gracias a plataformas, redes académicas o proyectos colaborativos?
En este caso pareciera que algunas ventajas tradicionales pierden peso o se vuelven redundantes, sin embargo, su participación puede tener un valor estratégico si quiere consolidar su
imagen en una nueva región geográfica, si desea influir en políticas científicas o ser parte de
comités editoriales o de evaluación o está buscando visibilidad institucional para su grupo de
investigación.
También al participar en estos foros puede poner a prueba ideas nuevas en entornos menos
formales o exponer a sus estudiantes y colaboradores más jóvenes a una retroalimentación
especializada mientras actúa como observador crítico. Finalmente, los congresos pueden
ofrecer contactos inesperados con actores fuera de su círculo habitual como empresas, instituciones internacionales u organizaciones no académicas y son espacios útiles para identificar nuevos talentos o reclutar doctorandos o posdoctorales. Así, aunque la asistencia a congresos no sea esencial para su desarrollo personal inmediato, puede resultar muy útil si se enfoca estratégicamente en objetivos más allá de los logros individuales, como son la visibilidad
institucional, la expansión de redes, la consolidación de liderazgo académico y el reclutamiento.
Así pues, podemos concluir que la asistencia a congresos ofrece ventajas para todas las personas relacionadas con el área específica de la que se trate, ya que son espacios de crecimiento profesional, formación continua, construcción de comunidades, proyección institucional y reclutamiento de talentos dentro de ese campo.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

3

�Personajes

Dra. Lynn Margulis (1938—2011)
Pasión por la Biología

L

ynn Margulis fue una de las figuras más influyentes en la Biología evolutiva del siglo XX. Nacida en
Chicago, Illinois, con el nombre de Lynn Petra Alexander, mostró desde temprana edad un interés
excepcional por las ciencias naturales. A los dieciséis años ingresó a la Universidad de Chicago, donde
obtuvo su primer grado en 1957. Posteriormente, completó una maestría en zoología y genética en la
Universidad de Wisconsin-Madison en 1960, y más tarde alcanzó el doctorado en genética en la Universidad de California, Berkeley en 1965. Esta sólida formación académica cimentó la base para una carrera científica que desafiaría paradigmas y transformaría la comprensión moderna de la vida.
Tras obtener su doctorado, Margulis inició su trayectoria docente en la Universidad de Brandeis en Massachusetts y poco después en la Universidad de Boston, donde desarrolló una parte fundamental de su
labor académica entre 1966 y 1988. Posteriormente se incorporó a la Universidad de Massachusetts
Amherst, institución en la que se consolidó como profesora distinguida en los departamentos de Botánica, Biología y Geociencias. Su vocación por la enseñanza fue paralela a una prolífica actividad investigadora y de divulgación, en la cual siempre mantuvo un compromiso con la rigurosidad científica y con
el impulso a nuevas generaciones de biólogos.
El aporte más trascendental de Margulis fue la formulación y defensa de la teoría endosimbiótica seriada. A través de ella propuso que las células eucariotas, surgieron a partir de asociaciones simbióticas
entre diferentes organismos procariotas. En particular, postuló que las mitocondrias y los cloroplastos
fueron originalmente bacterias libres que, al ser incorporadas en otras células, establecieron una relación de mutua dependencia que dio origen a nuevas formas de vida más complejas. Su artículo de
1967, Sobre el origen de las células mitóticas, fue inicialmente rechazado por numerosas revistas científicas, pero al ser finalmente publicado marcó un hito en la Biología. Décadas de acumulación de evidencia experimental confirmaron la validez de su propuesta, que hoy constituye un pilar de la Biología
celular y evolutiva.
Además de la teoría endosimbiótica, Margulis realizó importantes aportaciones en otros campos. Junto
con el químico James Lovelock, desarrolló una versión científica de la Hipótesis Gaia, la cual sostiene
4

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�que la Tierra funciona como un sistema
autorregulado en el que los organismos
vivos interactúan con el entorno inorgánico para mantener condiciones favorables
a la vida. Asimismo, en colaboración con
Karlene V. Schwartz, introdujo una clasificación biológica más amplia y comprensiva en su obra Cinco reinos (1982),
la cual influyó en la enseñanza de la Biología durante décadas. Su producción
intelectual fue abundante y diversa, incluyendo títulos como el Origen de las
células eucarióticas (1970), Simbiosis en
la evolución celular (1981) y, junto con su
Representación de la teoría endosimbiótica
hijo Dorion Sagan, publicaron varios volúmenes de divulgación científica entre los que destaca Microcosmos (1986).
El reconocimiento internacional a su trayectoria fue amplio. En 1983 fue elegida miembro de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos, y en 1999 recibió la Medalla Nacional de Ciencia,
otorgada por el presidente Bill Clinton, en reconocimiento a sus contribuciones a la Biología. Entre
otros galardones, destacan el Premio William Procter para Logro científico y Medalla Darwin-Wallace
de la Sociedad Linneana de Londres, ambos otorgados en 1999 y 2008, respectivamente. Estos reconocimientos reflejan el impacto profundo y duradero de sus aportes científicos.
A pesar de la trascendencia de sus descubrimientos, Margulis no estuvo exenta de controversias. Su
insistencia en destacar la simbiosis como un motor central de la evolución contrastaba con el enfoque
predominante del neodarwinismo, que priorizaba la competencia y la mutación genética. Este posicionamiento crítico la llevó a intensos debates con figuras como Richard Dawkins y George C. Williams.
Sin embargo, lejos de restarle legitimidad, su actitud crítica evidenció la necesidad de enriquecer el
discurso evolutivo con perspectivas más inclusivas sobre cooperación y mutualismo biológico.
Lynn Margulis falleció el 22 de noviembre de 2011 en su casa de Amherst, Massachusetts, cinco días
después de sufrir un accidente cerebrovascular hemorrágico. Estaba profundizando en el estudio de
diferentes espiroquetas y su
posible protagonismo en procesos simbiogenéticos. Continuaba ocupada en su intento de demostrar que el origen
de los flagelos de las células
eucarióticas se hallaba en las
espiroquetas, defendiendo la
importancia de los microorganismos en los procesos
evolutivos y la simbiosis como fuerza evolutiva de la vida.
La Dra. Margulis en su trabajo de laboratorio
PLANTA No. 31, Agosto 2025

Su legado permanece vigente
5

�no solo en la confirmación empírica de la teoría endosimbiótica, sino
también en la forma en
que transformó la visión
científica de la vida de
un escenario de competencia implacable hacia
uno en el que la cooperación entre organismos
desempeña un papel
esencial en la innovación y en la continuidad
de los sistemas biológicos. Su obra no solo redefinió aspectos fundamentales de la biología,
sino que también inspiró un cambio filosófico profundo en nuestra comprensión de la evolución y de la
vida en la Tierra.
Curiosidades de su vida y obra
• Amor por las bacterias. Desde joven se sintió fascinada por las bacterias y su potencial para explicar el origen de las células más complejas.

• Cuestionamiento de lo establecido. Se caracterizó por ser una investigadora rebelde y una crítica
de la visión puramente competitiva de la vida, y a menudo defendió sus ideas con gran convicción.
• Influencia en la ecología. Su enfoque en la cooperación y la simbiosis ayudó a dar forma a la ecología moderna, incluso impulsando el concepto del planeta como un sistema vivo y autorregulado.
Fuentes de información
Jablonka E. (2013). Lynn Margulis (1938-2011). Current Biology 23(3): R107-R110. https://doi.org/10.1016/
j.cub.2012.12.016
Lovelock J.E., Margulis L. (1974). Atmospheric homeostasis by and for the biosphere: The Gaia hypothesis. Tellus
26(1-22): 2-10. https://doi.org/10.1111/j.2153-3490.1974.tb01946.x
Margulis L. (1970). Origin of eukaryotic cells. Yale University Press.
Margulis L. (1993). Symbiosis in cell evolution: Microbial communities in the Archean and Proterozoic eons (2nd
ed.). W. H. Freeman (publicado en 1981)
Margulis L., Sagan D. (2000). What is life?. University of California Press.
Margulis L., Schwartz K.V. (1998). Five kingdoms: An illustrated guide to the phyla of life on earth (3rd ed.). W.H.
Freeman.
National Science Foundation. (1999). President Clinton awards national medals of science and technology.
https://www.nsf.gov/news/news_summ.jsp?cntn_id=103055
Sagan L. [Margulis L.]. (2017). On the origin of mitosing cells. Journal of Theoretical Biology 434: 2-11. https://
doi.org/10.1016/j.jtbi.2017.02.015 (publicado en 1967)
Sapp J. (2012). Obituary: Lynn Margulis (1938-2011). Nature 481(7380): 37. https://doi.org/10.1038/481037a
https://es.wikipedia.org/w/index.php?title=Lynn_Margulis&amp;oldid=168918641
6

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Divulgación científica

Vainilla, la Orquídea que Nació del
Amor y Floreció con la Cultura
Víctor Manuel Almaraz Valle 1 , Rosaura Méndez Pérez 2 ,
Carlos Eduardo Aguilar Castillo 1 * e Ingrid Lorena Santiago Cruz 1
1

Colegio de Postgraduados, Campus Montecillos, Posgrado en Fitosanidad-Entomología y Acarología.
Carretera México-Texcoco Km. 36.5, Montecillo, Texcoco 56264, Estado de México.
2

Colegio de Postgraduados, Campus Montecillos, Posgrado en Fitosanidad-Fitopatología.
Carretera México-Texcoco Km. 36.5, Montecillo, Texcoco 56264, Estado de México.
*Autor para correspondencia: aguilar.carlos@colpos.mx

Resumen
La vainilla es mucho más que un ingrediente en la repostería. Es una planta aromática del grupo de las orquídeas
con una historia profunda, un origen sagrado y una conexión cultural ancestral. En este documento exploraremos la leyenda que explica el nacimiento de esta orquídea de acuerdo con la cultura totonaca, la diversidad
biológica, las formas tradicionales y modernas de obtener el aroma, así como los retos que enfrenta actualmente su producción.
Palabras clave: orquídea, vainilla, cultura, tradición.

Abstract
The vanilla is much more tan just a baking ingredient. It
is an aromatic plant from the orchid family, which a rich
history, sacred origins, and a Deep cultural connection.
In this article, we Will explore the legend that tells the
origino f this orchid according to the Totonac culture, its
biological diversity, traditional and moderm methods of
extracting its aroma, as well as the challenges currently
facing its production.
Keywords: orchid, vanilla, culture, tradition.
¿Qué

es la vainilla y de dónde proviene?
La planta de la cual se obtiene la vainilla (Vainilla
planifolia) es una orquídea tropical perteneciente al
género Vanilla (Figura 1), es una especie muy apreciada y cultivada por su aroma agradable e intenso.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

Figura 1. Vainilla planifolia, orquídea originaria de México. Fotografía: Santiago Méndez Pérez.

Su origen se sitúa en las regiones húmedas del este
de México, particularmente en la región cultural del
Totonacapan, en Veracruz, que también abarca el
norte de Puebla y parte de Hidalgo. Fue esta zona
donde los pueblos nativos de la cultura Totonaca domesticaron por primera vez esta orquídea, desarrollaron técnicas únicas de cultivo y curado artesanal
para el aprovechamiento de la “vaina” (RodríguezDeméneghi et al., 2023). Actualmente, el cultivo de
vainilla se ha extendido a diversos países como Ma7

�dagascar, Indonesia y Tahití, pero México conserva el reconocimiento histórico y cultural de ser la cuna del origen
de esta planta.
La leyenda totonaca, el nacimiento
sagrado de la vainilla
En la cultura Totonaca, se conserva
una de las leyendas más bellas del México antiguo, escrita sobre un muro de
la plaza de Papantla (Figura 2). Es la
historia de la princesa Tzacopontziza,
consagrada a la diosa Tonacayohua, y
de Zkatan-Oxga, un joven príncipe. Al
enamorarse perdidamente uno del
otro, ambos huyeron al bosque para
vivir su amor prohibido, pero al ser
capturados, fueron sacrificados por
romper las leyes divinas de los Dioses.
Del lugar donde cayó la sangre de los
enamorados brotó una planta desconocida: una enredadera de flores pálidas que, con el tiempo, dio frutos aromáticos. Así, según la tradición totonaca, nació la vainilla. Esta leyenda no es
solo un relato poético, sino que refleja Figura 2. Leyenda Totonaca de la vainilla, escrita por José de Jesús Núñez y
Domínguez. Fotografía: Elvira Lizet Cisneros Sandoval
el profundo respeto que la cultura totonaca tiene por la naturaleza, y cómo
su cosmovisión asocia la flora con la espiritualidad, el
nal y ancestral, la vainilla promueve y contribuye a la
sacrificio y la continuidad de la vida.
conservación de la biodiversidad, como lo demuestran los sistemas agroforestales en los que se asocia
Vainilla y la identidad totonaca
con cacao y otros árboles nativos de la selva tropical
(López Juárez et al., 2019).
Para el pueblo Totonaco, la vainilla no es solo un producto agrícola, sino una herencia cultural viva. A lo
¿Existen otras vainillas?
largo del tiempo, las técnicas tradicionales de cultivo,
La vainilla (V. planifolia) no es la única especie del
curado y preservación han sido transmitidas de genegénero Vanilla, el cual incluye aproximadamente 100
ración en generación, por lo que, antes de sembrar
especies distribuidas en regiones tropicales de todo
esta orquídea, se realizan rituales previos y los canel mundo. Entre las especies más conocidas, además
tos que acompañan el trabajo agrícola reflejan una
de V. planifolia, se encuentran V. tahitensis, que se
relación estrecha y sagrada entre el ser humano y la
distingue por poseer aroma suave con notas frutales,
planta. Al tratarse de una planta de cultivo tradicio8

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�y V. pompona, cuyas vainas son más robustas y comúnmente empleadas en la industria de la perfumería. También se incluyen especies nativas de México
y Centroamérica como V. odorata y V. inodora, orquídeas con escaso valor comercial. A pesar de la diversidad de especies, V. planifolia es la orquídea más
apreciada en el mundo debido a su alto contenido de
vainillina, el compuesto responsable del aroma característico, su complejo perfil aromático con más de
200 compuestos volátiles, y su notable adaptabilidad
al cultivo intensivo (Gallage y Moller, 2018).
El arte del curado tradicional de la vainilla
El curado tradicional de la vainilla es un proceso minucioso que transforma unas vainas verdes e inodoras en una de las esencias más valoradas del mundo
(Figura 3). Este procedimiento consta de cuatro etapas clave. La primera es la “matanza”, en donde las
vainas recién cosechadas se escaldan en agua caliente para detener la actividad celular y activar las enzimas internas, le sigue el “sudado”, en donde las vainas se fermentan envueltas en mantas calientes durante varios días, facilitando la transformación enzimática de precursores químicos en compuestos aromáticos. Posteriormente, se realiza el “secado”, mediante una exposición solar controlada durante varias semanas, reduciendo la humedad en las vainas y
preservando los aromas. Finalmente, las vainas pasan al “acondicionamiento”, etapa en la que se almacenan en cajas de madera durante uno a tres meses,
para permitir el desarrollo pleno del perfil aromático
(Peña-Barrientos et al., 2022). Durante este proceso,
la “glucovanilina” presente originalmente en las vainas se convierte en vainillina libre, responsable del
característico aroma de la vainilla natural.
La vainilla y su peculiar aroma
El aroma de la vainilla es el resultado de un complejo
proceso de curado e interacción entre diversas moléculas volátiles. Durante este proceso, enzimas como
la B-glucosidas actúan sobre precursores como la
PLANTA No. 31, Agosto 2025

Figura 3. Vainas verdes o inmaduras de la orquídea V.
planifolia, materia prima para la obtención de vainilla.
Fotografía: Santiago Méndez Pérez

glucovanilina, liberando vainillina y otros compuestos responsables del perfil aromático característico.
Si bien la vainillina es el principal compuesto aromático, no es el único presente en las vainas. También
se encuentran el ácido vainílico, el ácido phidroxibenzoico, distintos aldehídos aromáticos, alcoholes y ésteres volátiles. la sinergia entre estos
componentes da lugar a un aroma cálido, dulce y especiado, altamente valorado en la gastronomía, la
perfumería y la industria farmacéutica.
Retos en la producción actual
A pesar del gran valor cultural y comercial de la vainilla, menos del 1% de la vainillina que se consume en
el mundo proviene de fuentes naturales. La mayor
parte se produce mediante métodos alternativos.
Uno de los más comunes es la síntesis química, utilizando compuestos como lignina (derivada de la madera) o guaiacol (derivado del petróleo), lo que permite una producción económica, aunque con un perfil aromático más simple. Otra vía es la producción
de vainillina biotecnológica, también conocida en
Europa como “bio-vainillina”, la cual se obtiene mediante fermentación utilizando microorganismos genéticamente modificados que transforman sustratos
9

�como la glucosa, el eugenol o el ácido ferúlico en vainillina (Santos et al., 2024).
En la actualidad el cultivo de vainilla enfrenta desafíos significativos. Uno de los principales es la dependencia de la polinización manual fuera de México, ya
que en otros países no están presentes las abejas del
género Melipona, polinizadoras naturales de las flores de vainilla (Figura 4). Esta limitación incrementa
los costos de producción y exige mano de obra especializada. Aunado a esto, la baja diversidad genética
de los clones cultivados de V. planifolia hace que las
plantas sean vulnerables a enfermedades, como la
marchitez causada por Fusarium oxysporum, lo que
compromete y pone en riesgo la estabilidad del cultivo. A estos desafíos se suman el robo de vainas
(impulsado por su alto valor comercial) y los efectos
del cambio climático, que alteran los ciclos de floración y reducen el rendimiento de las plantaciones.
Conclusiones
La vainilla no es solo una planta aromática de gran
valor económico, sino también un símbolo de la profunda conexión entre la cultura indígena de México y
la historia milenaria de esta orquídea. Su delicado
proceso de cultivo y transformación representa el
testimonio vivo del conocimiento ancestral del pueblo Totonaca, quienes han preservado esta tradición
a lo largo de los siglos. En un mundo que busca reconectarse con lo natural y auténtico, la vainilla mexicana ofrece mucho más que sabor, nos entrega una
lección de identidad, tradiciones, biodiversidad y sabiduría cultural enraizada en nuestras tradiciones.
Referencias
Gallage N.J., Moller B.L. (2018). Vanilla: The most popular
flavour. In N. J. Gallage &amp; B. L. Møller (Eds.), Vanillin: Biosynthesis, Molecular Biology, and Biotechnology. 3-24).
Springer. https://doi.org/10.1007/978-3-319-67903-7_1.
López J.S.A., Romero E.H., Cerdán C.C.R., Ortiz C.G.C.,
Reyes López. D. (2019). Asociación entre cultivos de cacao
y vainilla en un sistema agroforestal. Tropical and Subtropical
Agroecosystems.
https://doi.org/10.56369/
10

Figura 4. Flor de vainilla, cuya polinización natural depende de abejas del género Melipona.
Fotografía: Santiago Méndez Pérez.
tsaes.2622.
Peña-Barrientos A., Perea-Flores M.J., Martínez-Gutiérrez
H., Patrón-Soberano A., González-Jiménez F.E., VegaCuellar M.A., Dávila-Ortíz G. (2022). Physicochemical, microbiological, and structural relationship of vanilla beans
during traditional curing process. Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants. https://
doi.org/10.1016/j.jarmap.2022.100445.

Rodríguez-Deméneghi M.V., Aguilar-Rivera N., GhenoHeredia Y.A., Armas-Silva A.A. (2023). Vanilla cultivation in
Mexico: Typology, characteristics, and sustainability strategies.
Scientia
Agropecuaria.
sci.agropecu.2023.009.
Santos L.D.F., Lautru S., Pernodet J.L. (2024). Genetic engineering approaches for the microbial production of vanillin.
Biomolecules
14.
https://doi.org/10.3390/
biom14111413.

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Divulgación científica

Licófitas,
Joyas Ocultas del Mundo Vegetal
Adrián González-Martínez 1 ,2 * y Valeria Barra-Suárez 2
Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas - Unidad B,
Laboratorio de Biología de la Conservación y Desarrollo Sostenible - Laboratorio de Paleobiología.
Ave. De los Rectores s/n, Cd. Universitaria, San Nicolás de los Garza, N.L. México. 66455.
1

2

Flora de Nuevo León (@floradenuevoleon)

*Autor para correspondencia: adrian.gonzalezmtz@uanl.edu.mx

Resumen
Las licófitas son uno de los grupos vegetales más antiguos,
pero menos conocidos de los que actualmente habitan nuestro planeta. Se estima que aparecieron hace aproximadamente 410 millones de años, pero tuvieron su mayor esplendor entre los periodos Devónico y Carbonífero (entre 387 y
299 millones de años atrás), cuando desarrollaron las primeras formas arborescentes y bosques que se han encontrado
en el registro fósil. La debacle ecológica sucedida a finales
del Pérmico dio lugar a la desaparición de estos primeros
bosques, pero las licófitas se han perpetuado hasta nuestros
días como herbáceas pequeñas presentes en climas tropicales, templados, alpinos, desérticos y acuáticos. Se clasifican
en tres órdenes monotípicos: Lycopodiales, Isoëtales y Selaginellales con las respectivas familias Lycopodiaceae (con 17
géneros y 497 especies), Isoëtaceae (con un género y 238
especies) y Selaginellaceae (con un género y 762 especies).
Son plantas que carecen de flores y semillas, ya que su reproducción es por medio de esporas. Las Lycopodiales son
homospóricas (con un solo tipo de espora donde se producen ambos gametofitos), mientras que las Isoëtales y Selaginellales son heterospóricas (con dos tipos de esporas, denominadas comúnmente como femeninas y masculinas, de
forma similar a las Fanerógamas). Se estima que en México
se distribuyen unas 111 especies en los géneros Diphasiastrum (1), Huperzia (2), Lycopodiella (1), Lycopodium (1), Palhinhaea (1), Phlegmariurus (14) Pseudolycopodiella (1), Spinulum (1), Isoëtes (9) y Selaginella (80).

Abstract
Lycophytes are one of the oldest but least known plant
groups currently inhabiting our planet. It is estimated that
they first appeared around 410 million years ago, but they
had their greatest splendor during the Devonian and Carboniferous periods (between 387 and 299 million years ago),
when they developed the first arborescent forms and forests
that have been found in the fossil record. The ecological debacle that occurred at the end of the Permian led to the disappearance of these first forests, but lycophytes have persisted to this day as small herbaceous plants present in tropical, temperate, alpine, desert, and aquatic habitats. They are
classified into three monotypic orders: Lycopodiales,
Isoëtales, and Selaginellales, with the respective families
Lycopodiaceae (17 genera and 497 species), Isoëtaceae (with
one genus and 238 species), and Selaginellaceae (with one
genus and 762 species). These plants lack flowers and seeds,
as their reproduction is by means of spores. Lycopodiales are
homosporous (with a single type of spore where both gametes are produced), while Isoëtales and Selaginellales are
heterosporous (with two types of spores, commonly known
as female and male, like the angiosperms). It is estimated
that in Mexico, about 111 species are distributed in the genera Diphasiastrum (1), Huperzia (2), Lycopodiella (1), Lycopodium (1), Palhinhaea (1), Phlegmariurus (14) Pseudolycopodiella (1), Spinulum (1), Isoëtes (9) y Selaginella (80).

Palabras Clave
Licófitas, Lycopodiales, Isoëtales, Selaginellales, heterosporia, Lepidodendrales

Keywords
Lycophytes, Lycopodiales, Isoëtales, Selaginellales, heterospory, Lepidodendrales

PLANTA No. 31, Agosto 2025

11

�Introducción
El planeta Tierra es hogar de una inmensa variedad
de formas de vida como los dinámicos animales, los
omnipresentes hongos, las diminutas bacterias, las
indestructibles arqueas, los fundamentales protozoarios; pero un reino destaca por su belleza, ubicuidad,
e importancia: el reino de las plantas.

(Charophyta), surgen las plantas terrestres o embriofitas (Embryophyta), que comenzaron a conquistar
los antiguos y desolados continentes hace aproximadamente 515 millones de años (Morris et al., 2018),
a finales del periodo Cámbrico (el primer periodo de
la era Paleozoica) y comenzaron un largo proceso de
diferenciación que continúa hasta nuestros días.

Del mundo vegetal obtenemos, entre otras cosas,
alimento, medicina, refugio y materiales de construcción, vestimenta, energía y combustible, fragancia,
conocimiento a través del papel, protección, defensa
y bienestar.

Por un lado, surge un grupo de plantas que carecen
de tejidos vasculares (encargados del transporte de
agua y nutrientes) y de órganos vegetales desarrollados el cual se conoce bajo el nombre de briófitas,
que incluye a los antoceros (phylum Anthocerotophyta), las hepáticas (Marchantiophyta) y a los musgos (Bryophyta), donde la alternancia de generaciones, o el ciclo entre las fases haploides y diploides de
un organismo, es dominada por el gametofito, el cual
es la generación que crea los gametangios sexuales
(arquegonios y anteridios).

De acuerdo con una revisión de literatura realizada
por Hall y Knuth (2019), con sólo ver y estar rodeado
de plantas se puede obtener una disminución en el
estrés, ansiedad y depresión, mitigación de déficit de
atención, estrés postraumático y demencia, además
de una notoria mejoria en la retención de memoria,
autoestima, felicidad y satisfacción.
Comúnmente se relaciona el concepto de las plantas
con organismos de exuberante follaje, flores de todos colores y formas, o con gigantescos árboles que
cubren a los bosques tropicales lluviosos y los interminables bosques boreales cubiertos de nieve. Pero
perdidas entre las rocas de los acantilados, creciendo
al fondo de charcos y lagos someros, colgando de las
ramas de árboles y arbustos, o bien, creciendo debajo de éstos, vive un grupo de plantas de formas simples, sin flores ni semillas que, en algún momento,
crearon los primeros bosques del planeta.
Para hablar de estas enigmáticas plantas, primero
tenemos que remontarnos al pasado remoto; tan
remoto que muchas de las plantas a las que nos referiremos llevan extintas millones de años. Esto se señala, de forma tradicional, con el símbolo de la daga
u obelisco (†), como en el caso de †Leclercqia scolopendra.
Historia de las Licófitas
A partir del grupo de las algas multicelulares
12

Por el otro, las plantas que sí poseen tejidos vasculares, órganos bien diferenciados como los tallos y hojas y una dominancia de la fase esporofítica son agrupadas dentro del phylum Tracheophyta, también conocidas como plantas vasculares o traqueofitas. Aparecieron hace aproximadamente 450 millones de
años, en los límites de los periodos Ordovícico y Silúrico (Morris et al., 2018).
Hacia finales del Silúrico las plantas vasculares comenzaron a desarrollar características más complejas, particularmente en sus esporangios, los órganos
donde se forman las esporas. Los primeros grupos
que hicieron acto de presencia fueron los de la clase
†Rhyniopsida, con los géneros †Rhynia y †Cooksonia
(Figura 1). Estos son algunos de los representantes
más antiguos presentes en el registro fósil, con ejemplares datados hasta 433 millones de años de antigüedad. Eran plantas muy simples, con cortos tallos
dicotómicos de unos pocos centímetros de altura, sin
hojas ni raíces.
Las zosterófilas (clase †Zosterophyllopsida) aparecen
hace 420 millones de años, a principios del periodo
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Un poco más tarde, hace aproximadamente 410 millones de años (Morris et al., 2018), surge el grupo de
las licófitas (clase Lycopodiopsida). Aunque algunas
clasificaciones incluyen a las zosterófilas dentro de
éstas, generalmente se les separa por la presencia
hojas verdaderas simples en lugar de enaciones
(Figura 3), y por la producción de los esporangios terminales en lugar de en tallos esporangiales independientes (Kenrick y Crane, 1997). A pesar de ello, el
género fósil de licófitas †Asteroxylon presenta formas transicionales, como hojas no totalmente vascularizadas y carencia de esporófilas, respectivamente
(Gensel y Berry, 2001).

Figura 1. Cooksonia pertoni, reconstrucción artística de
Smith609 (2008).

Devónico, y se caracterizaron por poseer enaciones
(proyecciones con forma de espina), que se consideran los primordios de las hojas. Además, se cree que
sus tallos se desenrollaban de forma similar a la de
los helechos actuales, en un proceso denominado
vernación circinada. Algunos de los géneros más representativos de este grupo son †Zosterophyllum
(Figura 2), †Nothia, †Anisophyton y †Sawdonia
(Gensel, 1992; Steward y Rothwell, 1993).

Figura 2. Zosterophyllum, reconstrucción artística de Stefano (2016).
PLANTA No. 31, Agosto 2025

Figura 3. Progresión de las enaciones Sawdonia (1), a un
estado transicional en Asteroxylon (2), para finalmente
desarrollar hojas micrófilas en Leclercqia (3) (Peter
Coxhead, 2019).

A finales del periodo Silúrico y principios del Devónico aparecieron dos géneros cuyos fósiles muestran
una innovación, la vascularidad simple en sus hojas
con un solo haz vascular al centro que se denominan
micrófilas, acomodadas en espiral alrededor de los
tallos. †Baragwanathia (Figura 4) en lo que actualmente es Norteamérica, Australia, Asia y Europa central, con hojas acintadas que presentaba sus esporangios nacidos en las axilas de las hojas; y
†Drepanophycus en el norte de Europa, Canadá y
África, con hojas parecidas a espinas con los esporangios dispuestos en la axila de la cara superior de hojas especializadas, denominadas esporófilas. Ambos
géneros, entre otros, han sido asignados al orden
†Drepanophycales (Spencer et al., 2020).
13

�hasta nueve lóbulos. En †Haskinsiaceae, los géneros
†Haskinsia y †Artschaliphyton, cuyas hojas eran pecioladas y lanceoladas a sagitadas. Finalmente, en la
familia †Archaeosigillariaceae, cuya relación con las
otras †Protolepidodendrales no se ha aclarado del
todo, incluye a †Archaeosigillaria y a †Gilboaphyton,
con hojas laminares y prominentemente dentadas.
Aunque la mayoría de las plantas en este orden eran
de talla pequeña, el Devónico tardío vio la aparición
de nuevas innovaciones como la heterosporia
(producción de dos tipos de esporas, una
“masculina” o microspora y otra “femenina” o megaspora) en †Yuguangia, además de la producción de
crecimiento secundario, similar a la madera, en géneros como †Longostachys, con plantas que podían
alcanzar hasta 1.5 m de alto, †Wuxia y
†Lilingotrobus. Este último es considerado un precursor de los Isoëtales, que veremos más adelante. Por
otro
lado,
géneros
como †Lepidostrobus,
†Minostrobus y †Sublepidodendron se han identificado como homospóricos, con un solo tipo de espora
(Gensel y Berry, 2001; Garrienne et al., 2018).
Figura 4. Baragwanathia, encontrado en Victoria, Australia (Canley, 2012).

La época de mayor esplendor de las licófitas comenzó más o menos a mediados del Devónico, hace 387
millones de años. El orden †Protolepidodendrales,
ampliamente distribuido, abundante y diverso en
aquellos tiempos, se caracterizó por formas foliares
más elaboradas con dos, tres, cinco, hasta nueve lóbulos en sus hojas, las cuales se arreglaban de forma
helicoidal alrededor de los tallos. Además, sus esporangios eran globosos o ligeramente elongados (no
reniformes
como
en
las
zosterófilas
y
†Drepanophycales) y nacían en la superficie adaxial
(inferior) de las hojas vegetativas (Gensel y Berry,
2001; Spencer et al., 2020).
De acuerdo con Gensel y Berry (2001), en la familia
†Protolepidodendraceae se conocen géneros como
†Leclercqia (Figura 5),
†Minarodendron y
†Protolepidodendron, caracterizada por sus hojas de
14

El primero de los grupos de licófitas aún existentes
hasta nuestros días apareció, de acuerdo con Judd et
al. (2015), hace aproximadamente 380 millones de

Figura 8. Planta de sotol en su hábitat natural

Figura 5. Leclercqia scolopendra, fósil (izquierda) y re
construcción artística (derecha) (Benca, 2014).
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�años. El orden monotípico Lycopodiales será visto
más adelante en el trabajo.
Finalmente, †Protolepidodendropsis es uno de los
primeros árboles conocidos, con tallos de hasta 4 m
de alto y 10 – 20 cm de ancho. Crecían muy cercanos
unos de los otros, hasta 20 cm entre plantas, formando lo que podríamos considerar los primeros bosques del mundo a finales del Devónico (Berry y Marshall, 2015).
El último gran momento de apogeo de las licofitas
fue el periodo Carbonífero (del latín carbō, “carbón”,
y ferō “poseedor de”), caracterizado por los estratos
de roca con abundancia de depósitos de carbón, un
mineral nuevo en la Tierra hasta ese momento, presentes entre 359 y 299 millones de años (Figura 6).
El orden †Lepidodendrales, cuyo nombre se puede
traducir como “árboles con escamas” debido a las
cicatrices escuamiformes de las hojas visibles en los
fósiles, apareció en este periodo. Estaba compuesto
por plantas de porte arbóreo con troncos de hasta

30 m de alto y 1 m de diámetro y con ramificación
dicotómica con ramas de distinta longitud, con xilema secundario (pero no floema secundario), un córtex bien desarrollado y raíces robustas. Sus hojas micrófilas eran lineales, de algunos pocos centímetros
hasta 2 m de largo, y algunas poseían lígulas. Sus estructuras reproductivas son variables, pero en general se considera que eran heterospóricos, con microgametofitos similares a los de Selaginella y megagametofitos similares a los de Isoëtes, posiblemente
sus parientes existentes más cercanos (Thomas y
Cleal, 2018; Spencer et al., 2020).
Se conocen diversas familias y géneros dentro de los
†Lepidodendrales, donde destaca la familia
†Lepidodendraceae y el género †Lepidodendron
(Figura 7), además de la familia †Sigillariaceae con el
género †Sigillaria (Figura 8). Habitaban en zonas pantanosas y, al ser los primeros bosques de la historia,
aprovecharon las grandes concentraciones de dióxido de carbono (CO2) en la atmósfera del Carbonífero

Figura 6. Reconstrucción artística de los bosques de Licófitas (Lepidodendron, Sigillaria, Chaloneria), Helechos
(Calamites, Psaronius, Sphenophyllum), y Pteridospermatofitas (Lyginopteris, Cordaites, Callistophyton) durante el Carbonífero, por Robert Evans en The Botanic Garden of Smith College. Usado con autorización.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

15

�para crecer hasta tamaños descomunales nunca vistos, y ser extremadamente prolíficas. El CO2 capturado por estos árboles se almacenaba en sus tejidos
compuestos de celulosa y lignina que, al caer a las
aguas ácidas y anóxicas de los pantanos donde vivían, y sin organismos que pudieran descomponer
sus biopolímeros, quedaban perfectamente conservados mientras se comprimían por sedimentos y se
fosilizaban. Hasta el día de hoy, la mayor parte del
carbón mineral explotado para fines industriales y
energéticos proviene de estos depósitos del Carbonífero (Thomas y Cleal, 2018; Spencer et al., 2020).

El orden monotípico Selaginellales, el segundo de los
actualmente existentes aparece en el registro fósil
hace aproximadamente 340 millones de años (Banks,
2009) durante el Carbonífero temprano, aunque la
datación molecular señala su aparición hace 383 millones de años atrás, a finales del Devónico (Klaus et
al., 2017). Algunos géneros fósiles como
†Paurodendron, †Selaginellidites, y †Selaginellites,
datadas al Carbonífero, Cretácico y Terciario respectivamente, han sido incluidos dentro del género Selaginella (Jermy, 1990a).

Figura 8. Árbol de escamas identificado como Sigillaria en Nueva Escocia, Canadá (Rygel, 2010).

Figura 7. Lepidodendron, reconstrucción artística de
Bertelink (2016).
16

El colapso de estos primigenios bosques tropicales
habría ocurrido, de acuerdo con Falcon-Lang y Dimichele (2010), tras una serie de eventos de glaciación,
sequías prolongadas y la creciente competencia con
las pteridospermatofitas (grupo polifilético con características transicionales como frondas similares a
las de los helechos, pero con producción de semillas)
y coníferas. Estos cambios climáticos al final del Carbonífero y durante el Pérmico permitieron la adaptación de las licófitas a una mayor variedad de ambientes. La extinción masiva del Pérmico-Triásico que
marcó el fin del Paleozoico y el comienzo del Mesozoico eliminó los pocos bosques de licófitas que permanecían en los trópicos, pero permitió la diversificación de otros grupos.
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�El tercer y último orden monotípico de licófitas existentes, Isoëtales, apareció hace aproximadamente
250 millones de años. El género tipo no aparecería
hasta mucho después, pero en el inter, †Pleuromeia
fue el último género de licófitas con características
arborescentes, llegando a medir más de 2 m de alto
(Figura 9). Sus hojas eran triangulares y se acomodaban helicoidalmente alrededor del tallo (Looy et al.,
2021). Isoëtes L. surgió a principios del Jurásico, y se
ha mantenido prácticamente sin cambios desde entonces (Wood et al., 2020; Wilkström et al., 2022).

Clase Lycopodiopsida
Taxonomía y Diversidad
De acuerdo con PPG I (2016)* y Bánki et al. (2025), la
clase Lycopodiopsida actualmente comprende tres
órdenes monotípicos, tres familias, 19 géneros y cerca de 1497 especies descritas.
El clado de las licófitas es hermano del resto de las
plantas vasculares, que conforman el clado de las
eufilófitas (helechos y plantas con semilla). Estas relaciones, así como aquellas dentro de la clase Lycopodiopsida, se muestran en la Figura 10.
Descripción
Las especies actuales pertenecientes a la clase Lycopodiopsida son todas herbáceas, generalmente pequeñas (raramente superando 1 m de alto). Sus tallos
de ramificación dicotómica presentan vascularidad
de tipo protostela (con un núcleo central de xilema
rodeado por floema) en la mayoría de los casos, aunque también puede ocurrir el tipo sifonostela (con un
núcleo central de tejido medular rodeado por xilema
y floema).
Figura 9. Reconstrucciones artísticas de Pleuromeia
dubia, Cyclostrobus sydneyensis y Tomiostrobus
australis (Retallack, 2016).
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Las hojas de las licófitas, conocidas como micrófilas
(en contraste con las megáfilas) son muy simples,
*(Grupo para la Filogenia de las Pteridofitas)
17

�Figura 10. Relaciones filogenética entre diversos géneros
representativos de plantas vasculares (Tracheophyta).
Dentro de las licófitas (Lycopodiopsida), los géneros heterospóricos Selaginella e Isoëtes forman un clado hermano al género homospórico Lycopodium. Generado en
iTOL (Interactive Tree of Life) a partir de secuencias de
NCBI Taxonomy.

con una sola vena de tejido vascular al centro. Por lo
general acomodadas en espiral o en cuatro series,
son lineares, aunque también se presentan formas
ovadas a orbiculares, en color verde con algunos tonos azulados, rojizos o pardos. En Lycopodiales y Selaginellales las hojas pueden ser morfológicamente
distintas, mientras que en Isoëtales todas las hojas
son iguales.
Las raíces de las licófitas surgen de forma lateral en
el eje embriónico. En Lycopodiales, las raíces subsecuentes se generan en los tallos, en Isoëtales en la
región basal de la planta, mientras que en Selaginellales únicamente se producen a partir de un órgano exclusivo de la familia, el rizóforo (Figura 11).
Ramifican dicotómicamente al igual que los tallos.
Los representantes de los órdenes Selaginellales e
Isoëtales presentan un órgano del cual poco se sabe;
la lígula es un minúsculo apéndice que se presenta
en la axila adaxial entre la micrófila y el esporangio, y
se muestra como una pequeña proyección compuesta por cuatro partes: la vaina, el glosopodio, el cuerpo y el ápice. La lígula de las hojas de Selaginella tienen un origen multicelular, mientras que en Isoëtes
surgen de una sola célula epidérmica. Se ha especulado que la lígula tuvo una función de producción y
almacenamiento de mucílago, con el fin de evitar la
desecación de las micrófilas o de los esporangios.
18

Figura 11. El rizóforo es un órgano exclusivo del género
Selaginella. Se produce en los nodos de las ramificaciones dicotómicas (arriba) y es a partir de este que se
desarrollan las raíces (abajo). Tienen gravitropismo positivo, pero su función específica no está bien definida.

Hábitat
Las licófitas modernas son cosmopolitas, habitando
todos los continentes con excepción de la Antártida.
Su mayor diversidad se encuentra en los trópicos y
zonas templadas, aunque también se les encuentra
en zonas áridas y entre la vegetación alpina. Pueden
ser terrestres, epífitas, rupícolas o acuáticas
(Ambrose, 2018; Spencer et al., 2020).
Los gametofitos y las raíces de esporofitos de algunas
especies de licófitas tienen una muy fuerte relación
con hongos de la familia Densosporaceae
(Mucoromycotina), pero son muy propensas al ataque de hongos parasíticos (Perez-Lamarque et al.,
2022). Se ha encontrado que insectos de los órdenes
Diptera (moscas y mosquitos), Hemiptera (chinches,
pulgones y cigarras), Lepidoptera (mariposas y polillas) y Thysanoptera (trips) se alimentan de licófitas
(Fuentes-Jacques et al., 2022).
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�Ciclo de Vida
Las licófitas carecen de semillas,
flores o frutos, que son resultado de
una compleja evolución hacia ambientes más áridos y por la necesidad de las plantas por extender el
tiempo de vida de sus embriones,
proporcionándoles grandes cantidades de almidones y cubiertas gruesas. En su lugar, estas plantas llevan
a cabo su reproducción mediante
esporas. Las esporas se generan en
estructuras denominadas esporangios, los cuales nacen en la cara
adaxial o superior de las micrófilas
(esporófilas).
Los esporangios en Selaginellales y
algunas especies de Lycopodiales se
agrupan en una estructura especial
la cual recibe el nombre de estróbilo, compuesto por micrófilas que
presentan adecuaciones para acomodar a los esporangios, conocidas
como esporófilas. Los estróbilos
surgen en los extremos distales de
los tallos. En otras especies, los esporangios pueden ocurrir de forma
alternante con zonas de hojas vegetativas. Por otro lado, en Isoëtales
ocurren en el espacio ensanchado
de la base de cada hoja. Los esporangios de las licófitas surgen a partir de múltiples células epiteliales,
por lo que son considerados eusporangios.
Estas plantas presentan dos tipos de
Figura 12. Ciclo de vida de Lycopodium clavatum.
configuración de esporas. El orden
Lycopodiales es monosporangiado y homospórico; es
tético, en estado adulto los gametofitos son bisexuadecir, cuentan con un solo tipo de esporangio que
les, con arquegonios donde se forman los gametos
produce un solo tipo de espora. Esta espora, al prefemeninos (oosferas) y anteridios donde se producen
sentarse las condiciones adecuadas, germina en un
los gametos masculinos (anterozoides) (Figura 12).
gametofito minúsculo, micoheterótrofo y no fotosinPLANTA No. 31, Agosto 2025

19

�Por otro lado, los órdenes
Selaginellales e Isoëtales son
bisporangiados y heterospóricos, es decir, con dos tipos
de esporangios: megasporangios con megasporas y
microsporangios con microsporas. La germinación es
endospórica; las megasporas germinan en megagametofitos donde se forman los
gametos
femeninos
(oosferas) en sus arquegonios, y las microsporas en
microgametofitos que generan a los masculinos
(anterozoides) en sus anteridios (Figura 13).
En todas las licófitas, los anterozoides son motiles y requieren de por lo menos
una fina capa de agua en el
sustrato para poder nadar y
alcanzar las oosferas. En Lycopodiales y Selaginellales,
estos anterozoides son biflagedados,
mientras
en
Isoëtales son multiflagelados. Una vez que los gametos hacen contacto, se forma un cigoto, posteriormente origina un embrión que
eventualmente se transformará en el esporofito, que
es la fase dominante y visible de estas plantas, y el ciclo comenzará de nuevo. De
forma general se considera
que las fases gametofítica y
esporofítica son plantas independientes dentro de la Figura 13. Ciclo de vida de Selaginella denticulata, representativo de las licófitas heterospóricas.
misma especie.
20

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Importancia Económica
A lo largo de la historia se les han dado usos diversos.
Las esporas de algunas especies son inflamables una
vez secas, y han sido utilizadas en la fabricación de
pirotecnia y efectos especiales (Cobb y Foster, 1956),
como relleno para poros en madera de laudaría, lubricante hipoalergénico, agente antiapelmazante,
estabilizador en productos lácteos, así como talco,
cicatrizante y antiinflamatorio bajo el nombre de
“polvo de licopodio” o “azufre vegetal” (IllanaEsteban, 2007). Por otro lado, a las hojas, tallos e incluso plantas completas de diversas especies se les
atribuyen propiedades medicinales para tratar padecimientos renales y hepáticos, como anticancerígenos, diuréticos, antibacteriales, antipiréticos y para
tratar enfermedades venéreas (Santos-Reginaldo et
al., 2020). Las plantas son atractivas, y existen variedades con follaje iridiscente, rojizo o azul. Especies
de las tres familias se utilizan comúnmente en terrarios tropicales como plantas ornamentales.

[Figura 15]), o bien, arrosetadas a partir de un tubérculo (en Phylloglossum [Figura 16]).
Hojas micrófilas simples, no liguladas, lineares a acintadas, arregladas en espiral, ampliamente helicoidales o decusadas; isófilas o anisófilas (distintas a lo
largo de la planta), homófilas o heterófilas (distintas
distal y proximalmente); generalmente glabras; con

Figura 14. Huperzia lucidula, mostrando sus ramificaciones isótomas, micrófilas lineares y esporangios reniformes (Marcum, 2022).

ORDEN LYCOPODIALES
Orden Lycopodiales. Una familia, 17 géneros y 497 especies.
Descripción equivalente a la
familia Lycopodiaceae, de
acuerdo con Øllgaard (1990).
Son plantas herbáceas perennes o anuales; terrestres o epífitas; de crecimiento generalmente indefinido. Sus tallos
son elongados, subterráneos,
reptantes, ascendentes, erectos o colgantes, con ramificación dicotómica isotoma (con
ramificaciones de igual tamaño, como por ejemplo en Huperzia [Figura 14]) o anisótomas (con ramificaciones deFigura 15. Lycopodium clavatum, con sus ramificaciones anisótomas y prominentes
siguales, como en Lycopodium
estróbilos (Easonyu, 2022).

PLANTA No. 31, Agosto 2025

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�láminas de color verde; ligeramente suculentas a delgadas. Esporófilas similares o ligeramente distintas a
las hojas vegetativas, perennes o efímeras. Raíces
con ramificación dicotómica producidas en la base o
a lo largo de los tallos postrados.
Los estróbilos pueden ser simples o ramificados, péndulos a erectos sobre un pedúnculo delgado. Esporangios reniformes a subglobosos. Plantas homospóricas, con esporas no fotosintéticas, tetrahédricas,
triletes.
Familia Lycopodiaceae
Familia Lycopodiaceae. Cuatro subfamilias (Bánki et
al., 2025)
Subfamilia Lycopodielloideae
Brownseya (Kunze) Li Bing Zhang,
L.D.Sheph., D.K.Chen, X.M.Zhou &amp;
H.He (1 sp.)
Lateristachys Holub (3 spp.)
Lycopodiella Holub (16 spp.)
Palhinhaea Franco &amp; Vasc. (27 spp.)
Pseudolycopodiella Holub (16 spp.)
Subfamilia Lycopodioideae
Austrolycopodium Holub (7 spp.)
Dendrolycopodium A.Haines (5 spp.)
Diphasiastrum Holub (26 spp.)
Diphasium C.Presl ex Rothm. (4 spp.)
Lycopodium L. (7 spp.)
Pseudodiphasium Holub (1 sp.)
Pseudolycopodium Holub (1 sp.)
Spinulum A.Haines (2 spp.)
Subfamilia Lycopodiastroideae
Lycopodiastrum Holub ex R.D.Dixit (1 sp.)
Subfamilia Huperzioideae
Huperzia Bernh. (61 spp.)
Phlegmariurus Holub (309 spp.)
Phylloglossum Kunze (1 sp.)
22

Figura 16. Phylloglossum drummondii, inconspicua licófita endémica a Nueva Zelanda y Australia, con sus hojas
lineares y estróbilo que alcanza 5 cm de alto (Campbell,
2015).

ORDEN ISOËTALES
Orden Isoëtales. Una familia, un género, 238 especies.
Descripción equivalente a la familia Isoëtaceae, de
acuerdo con Jermy (1990b). Son plantas herbáceas
perennes o anuales; acuáticas o terrestres únicamente en zonas de suelos saturados. Con tallos similares
a cormos o pseudobulbos, arrosetados, con una corteza exterior, generalmente con numerosos vástagos
creciendo alrededor de la base.
Hojas micrófilas de 2-100 cm de largo, hasta 10 mm
de ancho; filiformes, triangulares o teretes
(cilíndricas); con ápices largos y agudos; generalmente glabras; de color verde claro al estar frescas y húmedas. Liguladas adaxialmente, por encima del esporangio. Hojas fértiles (poseedoras de esporangios viables) de producción continua o estacional.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Sin estróbilos. Esporangios producidos en la base de
la cara adaxial de las hojas; ovoides a subglobosos;
parcialmente septados o con trabéculas transversales. Al ser plantas heterospóricas, presentan esporas
de dos tipos, generalmente en esporangios distintos
(aunque pueden producirse ambos tipos en el mismo
esporangio); megasporas triletes con pronunciadas
crestas ecuatoriales, equinadas, rugosas a levigatas
microsporas monoletes de aproximadamente una
décima parte del tamaño de las megasporas, monoletes, equinadas, tuberculadas a papiladas.

Familia Isoëtaceae
Familia Isoëtaceae. Un género, 238 especies. Descripción equivalente al género Isoëtes (Figuras 17 y 18).

Figura 18. Megasporas de Isoëtes echinospora. El epíteto
echinospora significa “esporas espinosas” (Brinker,
2021).

Isoëtes L. (238 spp.)
tas herbáceas perennes o anuales; terrestres, rupícolas o raramente epífitas o hemiepífitas; de crecimiento indefinido sólo restringido por las temporadas o
condiciones ambientales. Sus tallos son postrados,
extendidos y reptantes, decumbentes, cespitosos,
caulescentes, erectos, o formando rosetas; articulados (con la presencia de un engrosamiento o constricción en los nudos) o no; generalmente ramificados pseudo-dicotómicamente; algunas especies flageliformes (con los ápices de las ramas terminales
alargados y adelgazados).

Figura 17. Isoëtes durieui, licófita acuática con aspecto
similar a un pasto o cebolla (Labeyrie, 2022).

ORDEN SELAGINELLALES
Orden Selaginellales. Una familia, un género, 762 especies.
Descripción equivalente a la familia Selaginellaceae,
de acuerdo con González-Martínez (2024). Son planPLANTA No. 31, Agosto 2025

Hojas micrófilas, liguladas adaxialmente; lineares a
orbiculares; arregladas en numerosos filas espirales
de hojas pequeñas y lineares (isófilas) o en cuatro
filas paralelas y dorsoventrales: dos filas laterales de
hojas extendidas, dos filas medias de hojas ascendentes y con hojas axilares simétricas cubriendo los
nudos ventralmente (anisófilas); laxas a fuertemente
apresadas al tallo; con ápices obtusos a largamente
aristados; márgenes enteros a largamente ciliados,
hialinos, amarillentos o verdosos; con bases decurrentes a adnatas (isófilas), auriculadas, no auriculadas, a peltadas y usualmente con las acroscópicas
más grandes que las basiscópicas en las hojas medias
23

�y laterales (anisófilas), glabras a pubescentes; láminas verdes adaxialmente, a veces con grupos de células hialino-plateadas llamadas idioblastos y de color
variable abaxialmente (verdes, plateadas, estramíneas a rojizas); ligeramente suculentas a cartáceas.
Presentan un órgano “intermedio” entre tallos y raíces, denominado rizóforo, exclusivo al género; con
geotropismo positivo, con color y grosor de importancia taxonómica; exclusivamente en la base de los
tallos o a lo largo de éstos; ramificados dicotómicamente al hacer contacto con el sustrato y a partir de
los cuales se generan raíces verdaderas.

Figura 20. Selaginella selaginoides, licófita terrestre y
rupícola de las zonas templadas del hemisferio norte. A
pesar de ser la especie tipo del género, es la que más
difiere del resto ya que no posee estróbilos bien definidos ni rizóforos (Ibáñez, 2021).

tarios y fijados al raquis del estróbilo, dehiscentes
por medio de aperturas distales.

Figura 19. Selaginella apoda, licófita terrestre nativa de
Norteamérica (Graham, 2022).

Estróbilos generalmente terminales, aunque pueden
ser laterales o con regresión a crecimiento vegetativo; tetragonales, raramente aplanados o cilíndricos;
compuestos de esporófilas (hojas diferenciadas)
aquilladas y generalmente lanceoladas; arregladas en
espiral o en cuatro filas, uniformes o dimórficas; con
una lígula adaxial de mayor tamaño a la de las hojas
vegetativas. Esporangios cortamente peciolados, soli-

24

Al ser plantas heterospóricas, presentan esporangios
y esporas de dos tipos; megasporangios con 4 megasporas tetraédricas triletes, amarillas, pardas a
blancas (que germinan en gametofitos femeninos) y
microsporangios con centenas de microsporas tetraédricas triletes, rojizas, anaranjado a amarillas
(que germinan en gametofitos masculinos). Ambos
tipos pueden estar ornamentados por papilas, verrugas, rugosidades o espinas en las superficies y en las
crestas. La cantidad y distribución de micro y megasporangios por estróbilo es variable y suele utilizarse
como característica diagnóstica. A las esporófilas que
albergan microsporangios se les denomina microsporófilas, y a las que sostienen a los megasporangios, se
les llama megasporófilas.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Las licófitas en México
De acuerdo con Mickel y Beitel (1988), Mickel y
Smith (2004), Villaseñor (2016), Tejero-Díez (2019),
Madrigal-González y Bedolla-García (2021), PatiñoSiciliano (2021) y Bánki et al. (2025), las especies de
licófitas enlistadas en la Tabla 1 se distribuyen dentro
del territorio mexicano.

Figura 21. Selaginella novoleonensis, licófita arrosetada terrestre nativa de México y Centroamérica,
comúnmente confundida con la famosa “flor de peña” o “rosa de Jericó” (Selaginella lepidophylla)
(González-Martínez, 2024).
Familia Selaginellaceae

Familia Selaginellaceae. Un género, 762 especies.
Descripción equivalente al género Selaginella (Figura
19).
Selaginella P.Beauv. (762 especies)
De acuerdo con Weststrand &amp; Korall (2016), se puede dividir en siete subgéneros.
Selaginella subg. Selaginella P.Beauv. (2 spp.)
[Figura 20]
Selaginella subg. Rupestrae Weststrand &amp; Korall
(50 spp.)
Selaginella subg. Lepidophyllae (Li Bing Zhang &amp;
X.M.Zhou) Weststrand &amp; Korall (3 spp.)
[Figura 21]
Selaginella subg. Gymnogynum (P.Beauv.)
Weststrand &amp; Korall (40 spp.)
Selaginella subg. Exaltatae Weststrand &amp; Korall
(3 o 6 spp.)
Selaginella subg. Ericetorum Jermy (6 spp.)
Selaginella subg. Stachygynandrum (P.Beauv. ex
Mirb.) Baker (aprox. 600 spp.)
PLANTA No. 31, Agosto 2025

Conclusión
Las licófitas son plantas que han estado presentes en
nuestro planeta por cientos de millones de años. En
su momento, llegaron a ser las especies vegetales
dominantes en los ecosistemas terrestres y formaron
los primeros bosques conocidos, mientras que en la
actualidad son inconspicuas entre el follaje tropical,
en acantilados y pedregales desérticos. Su necesidad
de agua líquida para la reproducción puede considerarse un factor limitante para su dispersión, que es
superada por las plantas con semillas y algunos helechos. A pesar de su relativa rareza, se han encontrado usos medicinales e industriales para estas plantas,
particularmente de sus esporas. México alberga alrededor de 111 de las casi 1500 especies conocidas de
este grupo, donde la familia Selaginellaceae (género
Selaginella), la más diversa de las licófitas, cuenta
con 80 de sus 762 especies distribuidas dentro del
territorio nacional.
Agradecimientos
Dedicamos este trabajo a la memoria, obra y vida del
Dr. Sergio Moreno Limón†, por introducirnos a este
maravilloso tema con su particular estilo en la clase
de Biodiversidad de Criptógamas. Asimismo, agradecemos al Dr. Iván A. Valdespino Quintero, la Dra. Susana Favela Lara y al Dr. Sergio M. Salcedo Martínez
por su apoyo en la investigación del género Selaginella en Nuevo León.
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Lycophytes. Annual Plant Reviews Online 45: 91-114. https://
doi.org/10.1002/9781119312994.apr0488
25

�Tabla 1. Listado de especies de licófitas (clase Lycopodiopsida) pertenecientes a las familias Lycopodiaceae, Isoëtaceae
Selaginellaceae presentes en México. La distribución dentro del territorio mexicano se indica con los siguientes acrónimos estatales: Aguascalientes (AGS), Baja California (BCN), Baja California Sur (BCS), Campeche (CAM), Chiapas (CHIS),
Chihuahua (CHIH), Ciudad de México (CDMX), Coahuila de Zaragoza (COAH), Colima (COL), Guanajuato (GTO), Guerrero
(GRO), Hidalgo (HGO), Jalisco (JAL), Estado de México (MEX), Michoacán de Ocampo (MICH), Morelos (MOR), Nayarit
(NAY), Nuevo León (NL), Oaxaca (OAX), Puebla (PUE), Querétaro (QRO), Quintana Roo (QNR), San Luis Potosí (SLP), Sinaloa (SIN), Sonora (SON), Tabasco (TAB), Tamaulipas (TAM), Tlaxcala (TLX), Veracruz de Ignacio de la Llave (VER), Yucatán
(YUC), Zacatecas (ZAC).

NOMBRE

DISTRIBUCIÓN EN MÉXICO

Familia Lycopodiaceae
Diphasiastrum thyoides (Humb. &amp; Bonpl. ex Willd.) Holub

CHIS, HGO, OAX, PUE, VER

Huperzia beiteliana Mickel

SLP, OAX

Huperzia javanica (Sw.) Fraser-Jenk.

HGO, OAX

Lycopodium clavatum L. var. aristatum (Humb. &amp; Bonpl. ex Willd.) Spring

CHIS, COL, GRO, HGO, JAL, MEX, MICH, OAX, PUE, QRO, SLP, VER

Palhinhaea cernua (L.) Franco &amp; Vasc.

CHIS, COL, GRO, HGO, JAL, MEX, MICH, NAY, OAX, PUE, TAB, VER

Phlegmariurus bradeorum (Christ) B.Øllg.

CHIS

Phlegmariurus capillaris (Sodiro) B.Øllg.

CHIS

Phlegmariurus crassus (Humb. &amp; Bonpl. ex Willd.) B.Øllg.

OAX

Phlegmariurus cuernavacensis (Underw. &amp; F.E.Lloyd) B.Øllg.

CHIS, COL, DGO, GRO, JAL, MEX, MICH, MOR, OAX, PUE, SIN, VER

Phlegmariurus dichotomus (Jacq.) W.H.Wagner

CHIS, OAX, PUE, SLP, TAM, VER

Phlegmariurus hartwegianus (Spring) B.Øllg.

CHIS

Phlegmariurus hippurideus (Christ) B.Øllg.

CHIS, OAX

Phlegmariurus linifolius (L.) B.Øllg.

CHIS, GRO, OAX, PUE, VER

Phlegmariurus mexicanus (Herter) B.Øllg.

CHIS, OAX

Phlegmariurus mollicomus (Spring) B.Øllg.

OAX

Phlegmariurus myrsinites (Lam.) B.Øllg.

CHIS, GRO, OAX, PUE, VER

Phlegmariurus orizabae (Underw. &amp; F.E.Lloyd) B.Øllg.

CHIS, OAX, VER

Phlegmariurus pithyoides (Schltdl. &amp; Cham.) B.Øllg.

CHIS, COL, GRO, JAL, OAX, SLP, TAM, VER

Phlegmariurus pringlei (Underw. &amp; F.E.Lloyd) B.Øllg.

CHIS, COL, GRO, HGO, JAL, MEX, MICH, MOR, OAX, SIN, VER

Phlegmariurus reflexus (Lam.) B.Øllg.

CHIS, GRO, HGO, JAL, MEX, OAX, PUE, VER

Phlegmariurus taxifolius (Sw.) Á. Löve &amp; D. Löve

CHIS, CDMX, GRO, HGO, JAL, MEX, MICH, OAX, PUE, SLP, SIN, TAM,
VER

Phlegmariurus willsonii (Underw. &amp; F.E.Lloyd) B.Øllg.

OAX

Familia Isoëtaceae
Isoëtes cubana Engelm. ex Baker

YUC

Isoëtes howellii Engelm.

BCN, BCS

26

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Tabla 1. Continuación….

NOMBRE

DISTRIBUCIÓN EN MÉXICO

Isoëtes mexicana Underw.

CHIH, CDMX, DGO, GTO, HGO, JAL, MEX, MICH, MOR, NAY, QRO,
ZAC

Isoëtes montezumae A.A.Eaton

AGS, CHIS, GTO, JAL, MEX, MICH, MOR, NAT, ZAC

Isoëtes orcuttii A.A.Eaton

BCN

Isoëtes pallida Hickey

CAM, GRO, OAX

Isoëtes pringlei Underw.

CHIS, JAL, MEX

Isoëtes tamaulipana Mora-Olivo, A.Mend &amp; Mart.-Aval.

TAM

Familia Selaginellaceae
Selaginella acutifolia (Stolze) Valdespino

GTO, OAX, QRO

Selaginella apoda (L.) Spring

CHIS, HGO, JAL, MEX, OAX, PUE, TAM, VER

Selaginella arizonica Maxon

BCN, BCS, CHIH, NL, SON

Selaginella arsenei Weath.

CHIH, GTO, GRO, HGO, QRO, SLP, SON, VER

Selaginella arsiclada Valdespino

QRO, VER

Selaginella asprella Maxon

BCN

Selaginella barnebyana Valdespino

CHIS

Selaginella basipilosa Valdespino

OAX

Selaginella bernoullii Hieron.

CHIS, OAX

Selaginella bigelovii Underw.

BCN, BCS

Selaginella breedlovei Valdespino

CHIS

Selaginella carnerosana T.Reeves

COAH, NL

Selaginella chiapensis A.R.Sm.

CHIS, OAX

Selaginella cinerascens A.A.Eaton

BCN

Selaginella convoluta (Arn.) Spring

CAM, YUC

Selaginella corrugis Mickel &amp; Beitel

OAX

Selaginella cuneata Mickel &amp; Beitel

OAX

Selaginella delicatissima Linden ex A. Braun

AGS, CHIS, CHIH, COAH, COL, GTO, GRO, HGO, JAL, MEX, MICH,
MOR, NAY, NL, OAX, PUE, QRO, SLP, SIN, SON, TAM, VER, ZAC

Selaginella eremophila Maxon

BCN, COAH, NL, SON, ZAC

Selaginella eurynota A.Braun

CHIS, COL, GRO, JAL, NAY, OAX

Selaginella extensa Underw.

HGO, JAL, MOR, OAX, PUE, QRO, SLP, TAM, VER, ZAC

Selaginella finitima Mickel &amp; Beitel

CHIS, OAX, TAB, VER

Selaginella flagellata (L.) Spring

CHIS, COL, GRO, OAX, VER

Selaginella flexulosa Spring

CHIS, GRO, HGO, MICH, OAX, PUE, VER

Selaginella guatemalensis Baker

CHIS, OAX

Selaginella gypsophila A.R.Sm. &amp; T.Reeves

NL, SLP

Selaginella harrisii Underw. &amp; Hieron.

CHIS, OAX, TAB

PLANTA No. 31, Agosto 2025

27

�Tabla 1. Continuación….

NOMBRE

DISTRIBUCIÓN EN MÉXICO

Selaginella hirtifolia Valdespino

CAM, CHIS, GRO, HGO, MEX, MICH, MOR, OAX, QRO, SLP, TAM, VER,
YUC

Selaginella hoffmannii Hieron.

CHIS, COL, GRO, HGO, JAL, MEX, MICH, MOR, NAY, OAX, PUE, QRO,
SIN, VER

Selaginella huehuetenangensis Hieron.

CHIS

Selaginella illecebrosa Alston

CHIS, GRO, MOR, OAX, TAB, VER

Selaginella landii Greenm. &amp; N.Pfeiff.

JAL, MEX, MOR, NAY, OAX, PUE, ZAC

Selaginella lepidophylla (Hook. &amp; Grev.) Spring

AGS, BCN, BCS, CHIS, CHIH, COAH, COL, CDMX, DGO, GTO, GRO, HGO,
JAL, MEX, MICH, MOR, NAY, NL, OAX, PUE, QRO, SLP, SIN, SON, TAM,
TLX, VER, ZAC

Selaginella lindenii Spring

CHIS, OAX, TAB

Selaginella lineolata Mickel &amp; Beitel

COL, GRO, HGO, JAL, MEX, NAY, OAX, QRO, SLP, SIN, VER

Selaginella macrathera Weath.

CHIH, SON

Selaginella marginata (Humb. &amp; Bonpl. ex Willd.) Spring

DGO, GRO, JAL, NAY, SIN, VER

Selaginella martensii Spring

CHIS, HGO, MEX, OAX, PUE, QRO, SLP, VER

Selaginella mickelii Valdespino

CHIS, OAX, TAB, VER

Selaginella minima Spring

NAY, OAX

Selaginella mixteca Mickel &amp; Beitel

OAX, PUE

Selaginella moritziana Spring ex Klotzsch

CHIS, OAX

Selaginella mosorongensis Hieron.

OAX, VER

Selaginella mutica D.C.Eaton ex Underw.

CHIH

Selaginella nothohybrida Valdespino

GRO, HGO, OAX

Selaginella novoleonensis Hieron.

CHIH, COAH, GRO, NL, OAX, SON

Selaginella oaxacana Spring

CHIS, OAX, VER

Selaginella orizabensis Hieron.

VER

Selaginella pallescens (C.Presl) Spring

AGS, BCN, BCS, CHIS, CHIH, COAH, COL, CDMX, DGO, GTO, GRO, HGO,
JAL, MEX, MICH, MOR, NAY, NL, OAX, PUE, QRO, SLP, SIN, SON, TAM,
TLX, VER, YUC, ZAC

Selaginella parishii Underw.

COAH, NL, PUE, ZAC

Selaginella peruviana (Milde) Hieron.

CHIH, COAH, CDMX, DGO, GTO, HGO, JAL, MEX, MICH, OAX, NL, SON,
VER

Selaginella pilifera A.Braun

CHIH, COAH, NL, QRO, SLP, SON, TAM

Selaginella polyptera Valdespino

CHIS, HGO, OAX, SLP, VER

Selaginella popayanensis Hieron.

CHIS, GRO, OAX

Selaginella porphyrospora A.Braun

CHIS, COL, GTO, GRO, HGO, JAL, MEX, MICH, MOR, NAY, OAX, PUE,
SIN, SON, VER

Selaginella prolifera Valdespino

CHIS, GRO, OAX

28

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Tabla 1. Continuación….

NOMBRE

DISTRIBUCIÓN EN MÉXICO

Selaginella pulcherrima Liebm.

CHIS, GRO, HGO, OAX, VER

Selaginella reflexa Underw.

CHIS, GRO, HGO, JAL, NL, QRO, SLP, TAM, VER

Selaginella ribae Valdespino

DGO, GRO, NL, TAM

Selaginella rupincola Underw.

AGS, CHIH, COAH, CDMX, DGO, GTO, GRO, HGO, JAL, MEX, MOR, OAX,
PUE, QRO, SLP, SIN, SON, TAM, ZAC

Selaginella rzedowskii Lorea-Hem.

GRO, MOR

Selaginella sartorii Hieron.

CHIS, CHIH, DGO, GTO, GRO, JAL, MEX, MOR, NAY, NL, OAX, PUE, SLP,
SON, TAM, VER, ZAC

Selaginella schaffneri Hieron.

GTO, JAL, MEX, MICH, MOR, NAY, SLP, ZAC

Selaginella schiedeana A.Braun

CHIS, GRO, HGO, MEX, MICH, OAX, PUE, QRO, SLP, TAM, VER

Selaginella schizobasis Baker

CHIS, OAX, TAB, VER

Selaginella sellowii Hieron.

CDMX, DGO, GTO, HGO, JAL, MEX, MOR, OAX, PUE, QRO, SLP, SIN,
SON, TAM, VER, ZAC

Selaginella sertata Spring

CAM, CHIS, COL, GRO, HGO, JAL, MEX, MICH, NAY, OAX, SIN, VER

Selaginella silvestris Aspl.

CHIS, COL, HGO, JAL, MEX, OAX, PUE, VER

Selaginella simplex Baker

GRO, NAY, OAX

Selaginella stellata Spring

CHIS, COL, GRO, HGO, JAL, OAX, PUE, TAB, VER

Selaginella stenophylla A.Braun

HGO, NL, PUE, QRO, SLP, TAM, VER

Selaginella steyermarkii Alston

CHIS

Selaginella subrugosa Mickel &amp; Beitel

OAX

Selaginella tarda Mickel &amp; Beitel

COL, DGO, GRO, JAL, MEX, MICH, NAY, OAX, SIN

Selaginella tenella (P.Beauv.) Spring

CHIS, COL, DGO, GRO, HGO, JAL, MEX, JAL, MEX, NAY, OAX, SIN, VER

Selaginella tuberosa McAlpin &amp; Lellinger

OAX

Selaginella umbrosa Lem. ex Hieron.

CHIS, OAX, YUC

Selaginella underwoodii Hieron.

CHIH, SON

Selaginella viridissima Weath.

CHIH, COAH

Selaginella wrightii Hieron.

CHIH, COAH, GTO, GRO, HGO, JAL, MEX, NL, OAX, PUE, QRO, SLP,
SON, TAM, TLX, VER, ZAC

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doi.org/10.1371%2Fjournal.pone.0227525

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Divulgación científica

Agaves en México:
Una Planta Milenaria y Patrimonio Cultural
Víctor Manuel Almaraz Valle 1 , Jaime Alfredo Urzua Gutiérrez 2 ,
Rosaura Méndez Pérez 3 * y Harol Gabriel Revelo Tobar 1
Posgrado en Fitosanidad-Entomología y Acarología, Colegio de Postgraduados, Campus Montecillo, Carretera
México-Texcoco, km 36.5, Texcoco, Estado de México, México. C.P. 56264.
2
Departamento de Parasitología Agrícola, Universidad Autónoma Chapingo, Carretera México-Texcoco, km 38.5,
Texcoco, Estado de México, México. C.P. 56230.
3
Posgrado en Fitosanidad-Fitopatología, Colegio de Postgraduados, Campus Montecillo, Carretera MéxicoTexcoco, km 36.5, Texcoco, Estado de México, México. C.P. 56264.
1

Resumen
Los agaves son plantas emblemáticas de México, con alrededor de 166 especies distribuidas en el 90% del territorio
nacional. Su importancia es múltiple: ecológica, económica, cultural y espiritual. Entre ellos, el Agave salmiana,
conocido como agave pulquero, destaca por ser la base
del pulque, una bebida fermentada de origen prehispánico con profundo valor ritual y nutricional. En la cosmovisión mexica, el pulque era sagrado y su consumo estaba
regulado por normas religiosas. Actualmente, esta bebida
vive un resurgimiento en espacios urbanos como símbolo
de identidad cultural. La producción tradicional del pulque
implica técnicas específicas como el uso de “la semilla”
para su fermentación. Además del pulque, el agave pulquero ofrece múltiples productos como forraje, fibras y
miel. El cultivo sostenible de esta planta representa una
opción ecológica y económica vital para comunidades rurales, al tiempo que preserva un legado biocultural milenario.
Palabras clave:
bebida de los dioses, vino de agave, pulque.
Abstract
Agaves are emblematic plants of Mexico, with approximately 166 species distributed across 90% of the national
territory. Their importance spans ecological, economic,
cultural, and spiritual domains. Among them, Agave
salmiana, known as the pulquero agave, is particularly
significant as the base for pulque, a traditional fermented
beverage with deep pre-Hispanic ritual and nutritional
PLANTA No. 31, Agosto 2025

*Autor para correspondencia: mendez.rosaura@colpos.mx

value. In Mexica cosmology, pulque was sacred, and its
consumption was strictly regulated by religious norms.
Today, pulque is experiencing a revival in urban settings as
a symbol of cultural identity. Its traditional production
includes specific techniques such as the use of “la semilla” (fermented starter) for fermentation. Beyond pulque,
the agave provides forage, fibers, syrup, and other byproducts. Sustainable cultivation of the pulquero agave
represents an ecologically sound and economically valuable practice for rural communities, while also preserving a
vital biocultural heritage rooted in Mexico’s ancestral traditions.
Key words:
drink of the gods, agave wine, pulque

Introducción
En el vasto y diverso territorio mexicano, pocas son
las plantas que tienen una presencia tan emblemática y notable como el agave. Desde siluetas monumentales en los campos áridos por doquier hasta
protagonistas en tradiciones ancestrales y gastronomía local, los agaves no son simples plantas, son símbolos vivos de resistencia, identidad y riqueza cultural. Con aproximadamente 166 especies reconocidas
distribuidas en el 90% del país (García-Mendoza y
Galván, 1995), México se posiciona como el centro
de diversidad global de este género botánico.
31

�Diversidad de agaves en México
La variedad de agaves en México no sólo es extensa, sino también se encuentra entrelazada con el entorno ecológico
y humano. Desde las zonas desérticas
en el norte del país hasta los altiplanos
del centro y los valles tropicales del sur
de México, las especies de agave se
adaptan a una amplia gama de condiciones climáticas y de suelo (GarcíaMendoza y Galván, 1995).
Entre las especies más reconocidas y los
derivados que se aprovechan de ellas
encontramos el Agave tequilana
(tequila), Agave angustifolia (mezcal),
Agave fourcroydes (henequén), Agave
lechuguilla (saponinas) y por supuesto,
el Agave salmiana (Figura 1), conocido
por su uso en la extracción de aguamiel
y claramente la elaboración de pulque.
La riqueza biológica también es reflejo
de una estrecha interacción histórica
con los pueblos indígenas, quienes han
domesticado y manejado selectivamente variedades específicas por milenios
(Reyes-Agüero et al., 2019).
Los agaves son fundamentales tanto
ecológica como económicamente. En
términos ecológicos, contribuyen a la
conservación de microorganismos del Figura 1. Maguey (Agave salmiana) utilizado en la producción de aguamiel y
posterior elaboración de pulque.
suelo, reducen la erosión y actúan como
refugio y fuente de alimento para algunas especies
ductos gourmet, sino también ofrendas rituales y
de fauna, lo que incluye murciélagos polinizadores.
símbolos de identidad local, además, de ellos se obSu habilidad para prosperar en condiciones de sequía
tienen productos derivados como inulina, saponinas,
los convierte en aliados contra la desertificación (Blas
mieles, papel (Blas-Yáñez y Thomé-Ortiz, 2021). Por
-Yáñez y Thomé-Ortiz, 2021).
otro lado, también son fundamentales en la producDesde el punto de vista económico, los agaves sostieción de fibras naturales (como el henequén en Yucanen industrias multimillonarias, como las del tequila
tán), bioplásticos, bioenergía y cosméticos. Socialen Jalisco y mezcal en Oaxaca, Guerrero y Michoacán,
mente, sostienen empleos y fortalecen el turismo
estas bebidas artesanales no sólo representan prorural con rutas del mezcal y el tequila.
32

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Agave pulquero: una planta sagrada
El Agave salmiana, conocido como maguey pulquero,
tiene un lugar sagrado en la cosmovisión mesoamericana (Figueredo-Urbina et al., 2021). En la mitología
mexica, Mayahuel era la diosa del maguey y madre
del pulque, una figura asociada con la fertilidad, la
nutrición y la transformación. Su cuerpo se convirtió
en planta de agave tras ser destruida por los Tzitzimime (espíritus estelares), y de su savia nació el aguamiel. Junto a ella, los Centzon Totochtin —los 400
conejos— representaban los distintos tipos de embriaguez. Eran hijos de Mayahuel y Patecatl, dios de
la medicina y la fermentación. Cada conejo simbolizaba un estado emocional derivado del pulque: la alegría, la introspección, la melancolía, la euforia entre
otros (Reyes-Agüero et al., 2019).
El pulque y la moral prehispánica
El pulque no era de consumo libre y cotidiano. Esta
bebida sólo se les permitía a ancianos, embarazadas,
sacerdotes y guerreros destacados. En los códices y
crónicas, se relata que los jóvenes que se embriagaban sin autorización eran castigados con severidad:
desde azotes hasta la pena de muerte, según la gravedad de la ofensa. Para los mexicas, emborracharse
sin propósito de un ritual era un acto de desequilibrio
y una falta contra los dioses. Estas normas no eran
moralinas, sino reflejo del profundo respeto por una
bebida que conectaba lo humano con lo divino
(Reyes-Agüero et al., 2019).
Producción tradicional del pulque
La elaboración del pulque es un arte que requiere
mucha paciencia y conocimiento de la planta. Todo
comienza cuando el maguey madura, esto sucede
tras 8 a 15 años de vida, el agave se “pica” (se retiran
las hojas del cogollo o centro de la planta) para formar un cajete o cavidad donde se acumula el aguamiel (Ojeda-Linares et al., 2020).
Este néctar se extrae dos veces al día durante aproximadamente 6 meses con el acocote (recipiente parecido a una calabaza que esta agujerada por ambos
PLANTA No. 31, Agosto 2025

lados para extraer el aguamiel), y se transporta a tinajas donde inicia la fermentación. Un paso esencial
para la producción del pulque es la adición de “la semilla”, es decir, un lote de pulque previamente fermentado que activa el proceso microbiano para formar nuevamente el pulque. Este cultivo de bacterias
y levaduras transforma el aguamiel en pulque en
cuestión de horas o días, según el sabor y consistencia deseada y varía según clima, recipiente y tradición
familiar (Ojeda-Linaeres et al., 2020). Cada comunidad tiene sus secretos. En muchas regiones, aún se
fermenta en barricas de madera o tinajas de barro, lo
que da sabores únicos.
Pulque en la modernidad
Durante siglos coloniales, el pulque fue desplazado
por el vino europeo, aunque sobrevivió su uso y consumo en las zonas rurales. En el siglo XIX, se convirtió
en la bebida nacional por excelencia. Trenes pulqueros conectaban Hidalgo con la Ciudad de México, y
las “pulquerías” eran centros sociales y políticos. Para
el siglo XX su popularidad decayó frente a la cerveza,
pero actualmente (siglo XXI) ha resurgido como bebida artesanal (Figura 2), identitaria y alternativa
(García-Herrera et al., 2010; Narváez-Suárez et al.,
2016). Hoy en día, pulquerías modernas combinan
tradición con innovación, ofreciendo una diversidad
de sabores como mango, avena, piñón, cacao, frutos,
cereales, vino e incluso semillas (Blas-Yáñez et al.,
2018).

Beneficios nutricionales del pulque
Más allá del valor simbólico, el pulque es una bebida
fermentada con propiedades probióticas. Contiene
bacterias lácticas y levaduras que benefician la flora
intestinal. Además, aporta: vitaminas del complejo B
(especialmente B1 y B12), minerales como fósforo,
hierro y calcio, proteínas vegetales y azúcares naturales de lenta absorción (Ojeda-Linares et al., 2020). En
algunas regiones del centro de México, se ofrece a
mujeres lactantes, niños y ancianos como tónico nu33

�Figura 2. Pulque curado de diferentes sabores

tritivo (Villalpando et al., 1993). También se considera un reconstituyente para trabajadores del campo,
ideal para acompañar alimentos como barbacoa o
tamales.
Importancia del agave pulquero
El agave pulquero es clave en los ecosistemas del altiplano mexicano (Figura 3). Sus raíces profundas evitan la erosión del suelo, presentan un metabolismo
CAM (metabolismo acido de las crasuláceas) lo que lo
hace altamente eficiente en el uso de agua, y su presencia favorece la biodiversidad. Además, su aprovechamiento tradicional se realiza sin deforestar, lo que
lo convierte en un cultivo amigable con el ambiente
(Sandoval-Zapotitla et al., 2024).
El agave pulquero no sólo produce pulque. Sus derivados incluyen también al aguamiel natural
(endulzante suave y energético), miel de maguey
(alternativa al jarabe de agave), forraje cocido (para
ganado en temporadas secas), fibras naturales (para
34

escobas, cuerdas, artesanías) y larvas comestibles
(como el gusano blanco y el rojo). En regiones como
Hidalgo, Tlaxcala y Estado de México, miles de familias se benefician del cultivo y transformación del
agave pulquero. Existen rutas del pulque, festivales
magueyeros, talleres comunitarios y cooperativas
que impulsan su valor económico y cultural (BlasYáñez y Thomé-Ortiz, 2021).
Conclusión: Un patrimonio ancestral
El agave, y especialmente el agave pulquero, es mucho más que una planta. Es historia viva, alimento,
medicina, símbolo, sustento y espíritu. Representa la
resistencia de los pueblos originarios, la creatividad
de los campesinos y la renovación de una identidad
que busca futuro sin olvidar sus raíces.
En tiempos de crisis climática, pérdida de biodiversidad y alienación cultural, el agave nos recuerda que
es posible florecer con pocos recursos, resistir al
tiempo y transformar la tierra en vida.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Figura 3. Plantación de agave pulquero en el valle de México, en el suelo se observan las piñas de donde es extraído el
aguamiel después de un largo proceso de raspado

Referencias
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-338.
35

�Divulgación científica

Fitohormonas
Alan Avalos

Universidad Autónoma de Nuevo León,
Facultad de Ciencias Biológicas, Departamento de Biología Vegetal
Ave. Pedro de Alba s.n., Ciudad Universitaria, San Nicolás de los Garza, N.L., México. 66455

*Autor para correspondencia: alan.avalosx@uanl.edu.mx

Resumen
Las fitohormonas o también conocidas como hormonas vegetales actúan como mensajeros químicos capaces de regular el
crecimiento, desarrollo, defensa y adaptación de las plantas
ante factores bióticos y abióticos. Las primeras observaciones
fueron por Darwin y su hijo sobre el fototropismo, seguida por
los experimentos de Boysen-Jensen y Paál que demostraron la
existencia de sustancias móviles responsables de la curvatura
vegetal. Además existe una variedad de fitohormonas con distintos funcionamientos las auxinas, que promueven el enraizamiento y la formación de frutos; las giberelinas, relacionadas
con la germinación y el alargamiento de tallos y frutos; el etileno, implicado en la maduración y caída de órganos; las citoquininas, promotoras de la división celular; el ácido abscísico,
regulador de la dormancia y el estrés; los brasinosteroides, vinculados a la elongación celular; los jasmonatos, que activan
defensas químicas, y las estrigolactonas, asociadas a la arquitectura radicular y la simbiosis con micorrizas. No obstante, también se ha descubierto recientemente una nueva fitohormona,
siendo Dinor-OPDA en plantas no vasculares. Por último, las
fitohormonas han tenido un gran impacto y relevancia la agricultura, la producción de frutos sin semillas, la prolongación de
la vida de flores, la agricultura vertical y la biorremediación de
suelos contaminados.

Palabras clave
Fitohormonas, hormonas vegetales, crecimiento vegetal, defensa de plantas, regulación hormonal, agricultura moderna, fototropismo.

Abstract
Phytohormones, also known as plant hormones, act as chemical
messengers capable of regulating plant growth, development,
defense, and adaptation to both biotic and abiotic factors. The
36

first observations were made by Darwin and his son on phototropism, followed by the experiments of Boysen-Jensen and
Paál, which demonstrated the existence of mobile substances
responsible for plant curvature. Moreover, there is a wide variety of phytohormones with different functions: auxins, which
promote rooting and fruit formation; gibberellins, related to
germination and the elongation of stems and fruits; ethylene,
involved in ripening and organ abscission; cytokinins, which
promote cell division; abscisic acid, a regulator of dormancy and
stress; brassinosteroids, associated with cell elongation;
jasmonates, which activate chemical defenses; and strigolactones, linked to root architecture and symbiosis with mycorrhizal fungi. Recently, a new phytohormone has also been discovered, Dinor-OPDA, present in non-vascular plants. Finally, phytohormones have had a major impact and relevance in agriculture, including the production of seedless fruits, the extension
of flower longevity, vertical farming, and the bioremediation of
contaminated soils.

Keywords
Phytohormones, plant hormones, plant growth, plant defense,
hormonal regulation, modern agriculture, phototropism.

Las fitohormonas, también conocidas como hormonas
vegetales, sustancias químicas producidas naturalmente
por las plantas, forman parte del fascinante espectáculo
de la vida vegetal, estas se caracterizan por ser consideradas como mensajeros químicos que permiten a las plantas
tomar “decisiones” sin tener un cerebro, como es regular
su crecimiento, su desarrollo e incluso una forma de responder ante el ambiente, estas sustancias son las encargadas de transformar una simple y diminuta semilla en un
majestuoso árbol, también les ayudan a las plantas a
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�“saber” cuándo florecer o defenderse de los depredadores, porque sí, son capaces de defenderse de los depredadores, pero no nos adelantemos, volvamos al inicio de
todo, su descubrimiento.
Los primeros indicios sobre la existencia de las fitohormonas comenzaron con una simple observación en donde las
plantas y como estas “buscaban” la luz solar, a este fenómeno se le llamó fototropismo, que es un efecto producido por las fitohormonas, que se puede observar en los
girasoles, los cuales hacen esa “danza” lenta, pero impresionante de seguir al sol de este a oeste. En 1880, Charles
Darwin (sí, el mismo de la teoría de la evolución) y su hijo
Francis publicaron “The Power of Movement in Plants”
articulo donde documentaron un experimento crucial.
Notaron que cuando las plántulas de césped estaban expuestas a la luz lateral, estas se curvaban hacia ella (Figura
1), pero lo verdaderamente revolucionario fue descubrir
que, si cubrían la punta del brote, la plántula ya no respondía a la luz pese a estar el resto del tallo iluminado
(Figura 2). Ante esto, Darwin concluyó una intuición brillante: “Podemos inferir que cuando las plántulas están
expuestas a la luz lateral, alguna influencia es transmitida
desde la parte superior a la inferior, causando que esta
última se curve.”
Entre 1907 y 1913, otros investigadores, como BoysenJensen y Arpad Paál desarrollaron experimentos ingeniosos para comprender esto: Boysen realizó mutilaciones a
las puntas de los brotes y las volvió a colocar con una pequeña barrera entre ellas y el resto del tallo, pudo observar que, al utilizar una mica impermeable, el efecto de
movimiento desaparecía, pero cuando utilizó una gelatina
permeable, dicho efecto continuaba (Figura 3).
Por su parte, Arpad Paál, demostró que, si colocaba la
punta cortada de forma asimétrica sobre el tallo decapitado, la planta se curvaba alejándose del lado donde estaba
la punta. Estas interesantes observaciones sugerían que
alguna sustancia química se desplazaba desde la punta
hasta la base.

distintas alteraciones en el desarrollo de las plantas, como
es un crecimiento anormalmente alto con hojas pálidas y
delgadas, aparición de manchas de color marrón en el
tallo, raíces nuevas emergiendo desde nodos altos (punto
donde surgen las hojas), entre muchas anomalías más. No
fue hasta 1935 que Tejiro Yabuta logró aislar la sustancia
del hongo que causaba este desarrollo anormal en las
plantas, a dicha sustancia se le llamó giberelina, una de
las primeras fitohormonas en conocerse.
Por otra parte, mientras los científicos japoneses investigaban dicho hongo en las plantas de arroz, los agricultores chinos decidieron optar por medidas menos cautelosas, incineraban incienso para aterrorizar a las plantas y
también para madurar peras, fue en el año 1934 cuando
Rober Gane tras investigar esta forma tan peculiar de intimidar plantas, reconoció el etileno como una hormona
vegetal gaseosa, capaz de difundirse rápidamente a través
de los tejidos vegetales e iniciar respuestas fisiológicas
con cantidades mínimas. Si bien el Dr. Herbert Henry
Cousins ya especulaba su existencia en 1910 mediante
observaciones e influencia en el crecimiento de las plantas, no fue hasta la contribución clave de Gane (y los chinos) que se logró un entendimiento más claro respecto a
la producción endógena del Etileno, siendo el etileno el
principal responsable de la maduración de los frutos, así
como de su caída.
Posteriormente, Skoog y Miller (1955) al investigar factores que promovían el movimiento de la división celular en
cultivos de tejidos vegetales, lograron aislar una sustancia
del ADN del esperma de arenque que estimulaba la división celular, dicha sustancia se denominó citocinina, fitohormona encargada de fomentar la producción de hojas nuevas, hacer que crezcan los tallos e incluso capaz de
retrasar la senescencia.
Si bien, algunas fitohormonas son descubiertas por uno o
más investigadores, el caso del ácido abscísico (ABA) es
diferente, este fue identificado independientemente no

Otros investigadores en años posteriores realizaron hallazgos importantes como los siguientes:
En 1920, científicos japoneses investigaban una enfermedad en las plantas de arroz, dicha enfermedad se le
dio el nombre de “bakanae” (que se
refería a una plántula tonta), ya que
esta enfermedad causada por el honFigura 1. Efecto del fototropismo positivo de una planta, que es el efecto de incligo Fusarium proliferatum provocaba
narse a favor de una fuente de luz (Figueroa et al., 2017).
PLANTA No. 31, Agosto 2025

37

�en uno, ni dos, sino en tres laboratorios
en los años 60´s, investigando la latencia en semillas (que es el equivalente
botánico de los osos que hibernan).
Esta fitohormona es capaz de regular
varios procesos metabólicos en las
plantas, siendo capaz de inhibir la germinación de la semilla hasta que las
condiciones sean favorables y también
es crucial para la adaptación de las
plantas a condiciones adversas, regulando procesos de crecimiento de raíces y la senescencia (una manera elegante y sofisticada de referirse al enve- Figura 2. Nula inclinación de la planta ante el recubrimiento de la punta pese al
recibimiento de luz en el resto del tallo (Figueroa et al., 2017).
jecimiento de las plantas).
Una fitohormona considerada única debido a su estructuherbívoros e incluso oler bien para atraer depredadores
ra química, fue identificada en 1979 por Mitchell, investide los herbívoros (esto también aplica para los insectos).
gador estadounidense, quien descubrió que esta hormona
Además, libera compuestos volátiles que avisan de forma
es importante para la elongación celular, que se traduce
temprana a las plantas cercanas del peligro, y les da tiemen un crecimiento más robusto de las plantas, esta horpo para preparar sus defensas ante una posible amenaza.
mona también es capaz de interactuar con otras fitohorLa clase más recientemente de fitohormonas, las estrigomonas formando sinergias para regular una variedad de
lactonas, identificadas como hormona vegetal en el 2008
procesos en las plantas, además de ayudar a las plantas a
por Bouwmeester y Beveridge, quienes averiguaron que
adaptarse y enfrentarse a sustancias estresantes. Estas
esta fitohormona se produce únicamente a partir de carofitohormonas fueron denominada brasinosteroides.
tenoides, que es un tipo de pigmento encontrado en las
Otra fitohormona descubierta en 1990 y nombrada como
plantas, cumpliendo el papel crucial de comunicación enjasmonatos, fue descubierta por un grupo de científicos
tre la planta y su entorno. Una de las principales funcioque trabajaban con aceite de jazmín de la planta Jasmines de esta fitohormona es inhibir la formación de yemas
num grandiflorum, lo que los encaminó al descubrimiento
laterales, lo que ayuda a un crecimiento más vertical,
de la estructura molecular de los Jasmonatos, se podría
también cuentan con una simbiosis con micorrizas, esto al
decir que, por accidente, ya que los científicos querían
fomentar asociaciones simbióticas con hongos micorríciconocer por qué el jazmín olía tan rico. Es la fitohormona
cos, lo que favorece una mejor absorción de nutrientes.
encargada principalmente de la defensa de la planta, ya
También tiene la función de regular el desarrollo radicular
que esta activa respuestas de defensa cuando las plantas
y estimular la formación de raíces adventicias, las cuales
son dañadas por animales, insectos o patógenos, dichas
son las encargadas de absorber agua y nutrientes del suedefensas consisten principalmente en la producción y lilo.
beración de compuestos químicos para ahuyentar a los
Si bien la investigación de nuevas fitohormonas no ha cesado, siendo la más reciente la Dinor-OPDA como una nueva fitohormona que permite a las plantas no vasculares (como las briofitas), defenderse de agresiones externas (muy similar a los jasmonatos), esto mediante la activación
de mecanismos similares a las
plantas vasculares, las cuales utilizan jasmonatos. Hoy en día gran
parte del esfuerzo dedicado a las
Figura 3. Pese al corte, hay una flexión de la planta siempre y cuando el paso de luz sea
posible, mientras que su bloqueo o ausencia anula este efecto (Figueroa et al., 2017). fitohormonas se ha inclinado más
38

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�a sus aplicaciones prácticas, principalmente en el sector
agrícola.
La revolución de las fitohormonas en la agricultura moderna se basa en “programar” a las plantas para que crezcan más rápido, produzcan mayor cantidad de frutos e
incluso resistan mejor a las sequias, esto es logrado gracias a las auxinas, ya que se utiliza auxinas sintéticas en
los viveros, para que los esquejes desarrollen raíces más
rápido, aumentando su propagación, también se ha logrado que las auxinas puedan inducir la formación de frutos
sin semillas, por ejemplo brindándonos deliciosas uvas y
sandias, los cuales pueden disfrutarse sin preocuparse por
las semillas. Por su parte, las giberelinas que se utilizan
para acelerar la germinación, también son usadas para
aumentar el tamaño de los frutos individuales, alargar los
racimos para una mayor producción e incluso inhibe la
formación de semillas en las uvas grandes y dulces.
También se ha descubierto que el etileno es el responsable de acelerar la maduración de las frutas, esto se puede
observar en plátanos y manzanas, debido a que cuando
una manzana alcanza su madurez, y estimula a las que
están a su alrededor, por lo que se han creado almacenes
especializados para inhibir la liberación del etileno y que
los frutos tengan más vida de anaquel.
Otra manera en que los investigadores han logrado aplicar a mayor escala las fitohormonas ha sido en los sistemas de agricultura vertical, utilizando cocteles precisos de
fitohormonas para maximizar el crecimiento en espacios
reducidos, mejorar la calidad nutricional de los vegetales,
además de acelerar los ciclos de cosecha. También se han
utilizado fitohormonas en la biorremediación, por ejemplo, al utilizar auxinas para estimular el crecimiento de
raíces en plantas que absorben contaminantes del suelo.
Pero, probablemente te has preguntado, si ¿las fitohormonas/hormonas vegetales tienen alguna similitud con
las hormonas animales? Tanto plantas como animales
“resolvieron” el problema de la comunicación celular a
larga distancia, pero lo hicieron de maneras que reflejan
perfectamente sus estilos de vida. Los animales desarrollaron sistemas rápidos y específicos para la acción inmediata, mientras que las plantas desarrollaron sistemas versátiles y graduales para la adaptación a largo plazo, ambos
sumamente eficientes y acordes a su estilo de vida.
Por último, existe una gran diversidad de estudios en los
que se ha descubierto que la combinación de una o varias
fitohormonas puede producir resultados interesantes,
PLANTA No. 31, Agosto 2025

pero en algunos casos pudieran ser cuestionables, por
ejemplo, el uso excesivo de Auxinas y Giberelinas en la
calabaza, para que esta pueda alcanzar hasta 20 kilogramos por día durante su pico de crecimiento. Por otra parte, se sabe que las citocininas se utilizan en las flores cortadas, prolongándoles su “vida” por semanas e incluso
meses. Las citocininas también siguen ritmos circadianos,
pudiéndole hacer “saber” a la planta que hora es, lo que
ayuda a la producción de hormonas. Posiblemente has
escuchado hablar sobre “La paradoja del tamaño”, esto
hace referencia a que las mismas fitohormonas que fomentan el crecimiento de las flores, pueden hacer crecer
un árbol de hasta 100 metros, como es el caso de las sequoyas, es decir, utilizan las mismas moléculas básicas.
Este tipo de investigaciones no solo muestran el mundo
químico sofisticado y dinámico en el que viven las plantas,
sino que también resaltan lo fascinante de como las fitohormonas orquestan la vida vegetal.
Referencias
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clasifican. Ciencias Naturales.
Borjas-Ventura R., Julca-Otiniano A., Alvarado-Huamán L.
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fotoperiodicidad, Biología vegetal.
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Zárate A., Saucedo R. (2005). El centenario de las hormonas:
Un recuerdo de Ernest H. Starling y William M. Bayliss. Gaceta Médica de México 141(5).
39

�Solo Ciencia

©

Efecto de Florus y Boost en la
Productividad y Calidad del Cultivo
de Naranja Valencia
L.A. Sumuano-Barragán 1 , F. Flores-García 1 y D.M. Garza-García 2 *
Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Agronomía
Av. Francisco I. Madero S/N, Ex Hacienda el Canadá, 66050. General Escobedo, N.L. México
2
Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas
Av. Pedro de Alba s/n, Cd. Universitaria, 66455. San Nicolás de los Garza, N.L. México.
1

Resumen
Las microalgas son microorganismos fotosintéticos de
gran interés biotecnológico debido a su capacidad para
sintetizar compuestos de alto valor, como aminoácidos,
polisacáridos, vitaminas, antioxidantes y promotores naturales del crecimiento vegetal. Este estudio evaluó el
efecto de los bioestimulantes a base de microalgas FLORUS© y BOOST© en la productividad y calidad del fruto
de la naranja Valencia (Citrus sinensis) en un huerto comercial ubicado en Linares, Nuevo León, México. Se aplicaron tres tratamientos con distintas combinaciones y
concentraciones de los bioestimulantes, comparándose
con un testigo sin tratamiento. Las variables evaluadas
incluyeron el número total de frutos, el rendimiento estimado por hectárea, la tasa de aborto de frutos y el diámetro del fruto. Los resultados mostraron que la combinación FLORUS© + BOOST© en una proporción 2:1 incrementó el rendimiento en un 76% y redujo el aborto de
frutos en un 75% en comparación con el testigo, sin afectar el tamaño final del fruto. Estos hallazgos sugieren que
los metabolitos activos presentes en las microalgas influyen positivamente en los procesos reproductivos y fisiológicos del cultivo. La formulación combinada representa
una estrategia biotecnológica prometedora para aumentar la eficiencia y sostenibilidad de la citricultura, especialmente en regiones afectadas por el estrés climático.
Palabras clave: Microalgas, bioestimulante, agricultura,
Naranja

Abstract
Microalgae are photosynthetic microorganisms of great
biotechnological interest due to their ability to synthesize
40

©

*Autor para correspondencia: misael.garzagr@uanl.edu.mx

high-value compounds such as amino acids, polysaccharides, vitamins, antioxidants, and natural plant growth
promoters. This study evaluated the effect of the microalgae-based biostimulants FLORUS© and BOOST© on the
productivity and fruit quality of Valencia orange (Citrus
sinensis) in a commercial orchard located in Linares, Nuevo León, Mexico. Three treatments with different combinations and concentrations of the biostimulants were applied and compared to an untreated control. Evaluated
variables included total fruit count, estimated yield per
hectare, fruit abortion rate, and fruit diameter. Results
showed that the FLORUS© + BOOST© combination in a
2:1 ratio increased yield by 76% and reduced fruit abortion by 75% compared to the control, without affecting
final fruit size. These findings suggest that the active metabolites in microalgae positively influence key physiological and reproductive processes in the crop. The combined
formulation emerges as a promising biotechnological
strategy to enhance the efficiency and sustainability of
citrus production, especially in regions affected by climatic stress.
Key words: Microalgae, biostimulant, agriculture, orange

Introducción
Uno de los principales retos en la actualidad para la
humanidad es garantizar la seguridad alimentaria. Se
estima que para el año 2030, la hambruna podría
agravarse debido a las condiciones climáticas extremas (Varzakas &amp; Smaoui, 2024). Esta situación es aún
más crítica debido a la creciente limitación de recurPLANTA No. 31, Agosto 2025

�sos naturales disponibles para la producción agrícola.
En los sistemas agrícolas convencionales, el uso intensivo de fertilizantes sintéticos para el incremento
de los rendimientos agrícolas ya no representa una
opción viable ambiental ni económica; debido a que
el uso excesivo de fertilizantes genera daños sustanciales en la estructura fisicoquímica del suelo, disminución de las poblaciones de microorganismos benéficos, pérdida de fertilidad y acumulación de contaminantes como metales pesados (Pahalvi et al.,
2021). Ante este panorama, el uso de bioestimulantes se presenta como una alternativa innovadora para impulsar la productividad agrícola de forma más
sostenible y respetuosa con el medio ambiente.
Dentro de esta categoría, los bioestimulantes formulados a partir de microalgas sobresalen debido a su
riqueza en compuestos bioactivos como aminoácidos, polisacáridos, fitorreguladores, vitaminas y antioxidantes, los cuales promueven una mejor floración
y fortalecen a los cultivos frente a factores de estrés
biótico y abiótico (González-Pérez et al., 2021). Frente a este escenario, los bioestimulantes a base de
microalgas surgen como una estrategia innovadora
para incrementar la productividad agrícola de manera más limpia y sostenible.
Actualmente, la naranja Valencia representa uno de
los cultivos de mayor importancia económica en México, especialmente en regiones como Veracruz,
Nuevo León y Tamaulipas, siendo un pilar en la industria citrícola nacional tanto para consumo fresco
como para exportación (Martínez-Jiménez et al.,
2020). No obstante, el cultivo enfrenta retos importantes relacionados con el cambio climático, el estrés
hídrico, la presencia creciente de plagas y la degradación de los suelos. En el presente estudio se evaluó el
impacto de la aplicación foliar de los bioestimulantes
FLORUS© y BOOST©, desarrollados por GEXUS©,
empresa de agrobiotecnología reconocida como líder
en el uso y aplicación de microalgas en el sector agrícola (Miranda et al., 2024). El objetivo fue analizar el
efecto de estos bioestimulantes en el incremento del
rendimiento de la naranja Valencia en el municipio
PLANTA No. 31, Agosto 2025

de Linares, Nuevo León, México, como una estrategia
innovadora para fortalecer la productividad y la resiliencia del cultivo frente a los desafíos ambientales
actuales.
Material y métodos
Localización
El presente estudio se llevó a cabo en la huerta “San
José” ubicada en el municipio de Linares, Nuevo
León, México. Esta región se sitúa en una zona de
clima semiárido cálido, con veranos calurosos con
temperaturas que llegan a superar los 40°C, mientras
que en invierno las temperaturas llegan a descender
a 5°C. La mayor parte de las lluvias ocurre entre junio
y septiembre, generalmente en forma de tormentas
breves e intensas, durante julio y agosto se presenta
la canícula, un periodo especialmente caluroso y seco.
Las evaluaciones del ensayo se realizaron en tres fechas distintas: 16 de mayo, 17 de julio y 22 de septiembre del año 2024, con el objetivo de monitorear
los efectos de los tratamientos en diferentes etapas
del desarrollo del fruto.
Datos del cultivo
El ensayo se desarrolló en árboles de cítricos (Citrus
sinensis) de la variedad valencia. Los árboles evaluados tienen una edad promedio de 15 años y una densidad de población de 357 árboles por hectárea.
Tratamiento
Los tratamientos consistieron en la aplicación de los
productos FLORUS© y BOOST©, desarrollados por la
empresa GEXUS©. FLORUS© es un inductor de floración, mientras que BOOST© es un activador del sistema de resistencia sistémica adquirida (SAR, por sus
siglas en inglés), formulados a base de microalgas. La
tabla 1 presenta la dosificación específica de cada
tratamiento, así como la frecuencia de aplicación durante el ciclo evaluado.
41

�Tabla 1. Tratamientos aplicados de los bioestimulantes a base de microalgas FLORUS© y BOOTS©
Tratamiento
Tratamiento 1

Tratamiento 2

Tratamiento 3

Fecha de aplicación

Dosis

Producto

21 de febrero

1L/H

FLORUS©

27 de marzo

1L/H

FLORUS©

16 de junio

1L/H

BOOST©

21 de febrero

1L/H

BOOST©

27 de marzo

1L/H

BOOST©

21 de febrero

1L/H

BOOST©

27 de marzo

1L/H

BOOST©

16 de junio

1L/H

BOOST©

21 de febrero

1L/H

FLORUS©

27 de marzo

1L/H

FLORUS©

16 de junio

1L/H

BOOST©

Diseño experimental y toma de datos
Para la evaluación, se seleccionaron de forma aleatoria tres árboles por tratamiento, utilizando una distribución basada en números aleatorios con el fin de
evitar sesgos. En cada árbol, las mediciones se realizaron en cuadrantes espaciales (Norte, Sur, Este y
Oeste), cada uno con un tamaño de 1 m², considerando un árbol por cuadrante y una repetición. Esta
distribución permitió reducir el sesgo asociado a la
variabilidad espacial dentro del mismo árbol y obtener una representación integral del comportamiento
de cada tratamiento en el árbol completo.

identificar específicamente entre qué grupos existieron diferencias, se aplicó una prueba post-hoc de
comparación múltiple Tukey HSD con un nivel de significancia del 5% (p &lt; 0.05).

Evaluación de variables agronómicas
Se llevaron a cabo conteos del número total de frutos por árbol, así como mediciones del diámetro de
fruto. Estas evaluaciones se realizaron manualmente
con el apoyo de un flexómetro de bolsillo Truper©.
Las mediciones por cuadrante fueron promediadas
para obtener un valor representativo por árbol y tratamiento.

Los tratamientos con los bioestimulantes mostraron
un mayor número de frutos en todas las fechas de
evaluación. En particular, el tratamiento 3 (2L FLORUS© + 1L BOOST©) presentó el promedio más alto
con 162 frutos, frente a 94 frutos en promedio en el
testigo, con una diferencia altamente significativa (p
= 0.001), lo que representa un incremento del 76%
respecto al testigo. Este incremento productivo fue
consistente en las tres fechas de evaluación. Este aumento significativo sugiere que la combinación específica de ambos bioestimulantes a base de microalgas
favorece la formación y desarrollo de frutos, posiblemente debido a una mejora en los procesos fisiológicos relacionados con la floración y el cuajado, así co-

Análisis estadístico
Los datos obtenidos del número de frutos fueron sometidos a un análisis de varianza (ANOVA) con el objetivo de determinar la existencia de diferencias significativas entre los tratamientos y el testigo. Para
42

Resultados y discusión

Incremento en la fructificación
Los resultados presentados en la tabla 2 muestran el
impacto en el número de frutos obtenidos a partir de
la aplicación de los bioestimulantes a base de microalgas FLORUS© y BOOST© en las áreas tratadas
(Figura 1).

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Tabla 2. Número de frutos totales de cada tratamiento.
Fecha

Número de frutos
del Tratamiento 1

Número de frutos
del Tratamiento 2

Número de frutos
del Tratamiento 3

Número de frutos
del testigo

17 de mayo

121

138

163

99

24 de julio

114

135

161

92

25 de septiembre

114

134

161

91

Litros aplicados

3L de FLORUS©
2L de BOOST©

3L de BOOST©

mo a una mayor eficiencia en el uso de recursos
(Colla &amp; Rouphael, 2020).
En contraste con los demás tratamientos (Figura 2),
el Tratamiento 2 (3L de BOOST©) registró un incremento del 47 % en el número de frutos, con un promedio de 136 frutos por planta. Por su parte, el Tratamiento 1 (3L de FLORUS© + 2L de BOOST©) mostró un aumento del 25%, alcanzando un promedio de
116 frutos. Además, el análisis de comparaciones
múltiples (Tukey HSD) reveló diferencias significativas entre los tratamientos y el testigo. Estos resultados sugieren que podría existir una proporción óptima en la combinación de ambos bioestimulantes.
La producción total del cultivo reflejó estos mismos
patrones, para la estimación del tonelaje se estimó
un peso promedio por fruto de 188g. En la tabla 3, se
muestran los árboles tratados con la combinación de
FLORUS© y BOOST© (Tratamiento 3) alcanzaron una
producción de 10,805 kg por hectárea, superando en
76% al testigo (6,107 kg). Este resultado evidencia la
sinergia entre ambos bioestimulantes a base de microalgas en la proporción 2:1, los cuales optimizan el
rendimiento final del cultivo. Por su parte, el Trata-

a

2L FLORUS©
1L de BOOST©

0

miento 2 produjo 8,993 kg (47% más que el testigo) y
el Tratamiento 1 alcanzó 7,651 kg (25% superior al
testigo). López-Padrón y Martínez-González (2020)
documentan que los bioestimulantes algales no solo
incrementan el rendimiento, sino que contribuyen a
la resiliencia del cultivo frente al estrés climático, lo
que podría explicar el comportamiento observado en
condiciones semiáridas presentes en el municipio de
Linares, Nuevo León.
En cuanto al aborto de frutos, se observó que el Tratamiento 3 logró reducir este fenómeno en un 75%
respecto al testigo, seguido por el Tratamiento 2
(50% menos aborto) y el Tratamiento 1 (12.5% menos aborto). Esta reducción en el aborto de frutos
puede estar asociada a una mejor distribución de recursos hacia los órganos reproductivos y a una mayor
resistencia al estrés ambiental durante las etapas
críticas de desarrollo.
El tratamiento 3 ha demostrado ser el más efectivo
para mejorar sustancialmente el rendimiento del cultivo evaluado. El aumento del 76% en la producción
total, junto con la reducción del 75% en el aborto de
frutos, sugiere que la combinación de FLORUS© y

b

c

Figura 1. Vista área de las áreas de aplicación foliar; (a) tratamiento 1; (b) tratamiento 2 y (c) tratamiento 3
PLANTA No. 31, Agosto 2025

43

�de respuesta a los bioestimulantes.
Los resultados obtenidos relacionados al diámetro de los frutos presentan un comportamiento particular cuando se
comparan con los marcados
efectos observados en los parámetros de producción (tabla 4).
A lo largo del ciclo de evaluación, no se detectaron diferencias significativas en el diámetro entre los distintos trataFigura 2. Efecto de los tratamientos con bioestimulantes a base de microalgas sobre
mientos y el testigo. Durante la
el número promedio de frutos por árbol en naranja valencia.
primera medición realizada el
16 de mayo, se registraron variaciones menores enBOOST© así como su respectiva dosificación puede
tre los tratamientos, siendo de 2.15 cm para el Trataser una herramienta valiosa para los agricultores que
miento 1 y de 1.78 cm para el testigo. Sin embargo,
buscan maximizar la productividad de sus cultivos. La
estas diferencias iniciales se fueron atenuando proconsistencia de estos resultados a lo largo del ciclo
gresivamente a medida que avanzó el ciclo del cultide evaluación (de mayo a septiembre) refuerza la
vo, hasta alcanzar valores prácticamente equivalenconfiabilidad de los tratamientos. Estos hallazgos son
tes en la cosecha final del 23 de septiembre, donde
concordantes con investigaciones previas que han
todos los tratamientos mostraron diámetros similademostrado la capacidad de los bioestimulantes a
res que oscilaron entre 6.73 y 6.88 cm.
base de microalgas para mejorar los parámetros productivos en diversos cultivos (Prisa &amp; Spagnuolo,
2023; Ronga et al., 2019).
Los resultados evidencian que la aplicación adecuada
de bioestimulantes, en las proporciones correctas,
puede ser una estrategia efectiva para aumentar la
productividad agrícola (Bello et al., 2021). La ligera
diferencia en efectividad entre los tratamientos no
evidencia un impacto negativo significativo y puede
ser considerada dentro de las variaciones normales

La ausencia de variaciones significativas en el diámetro de los frutos sugiere que el mecanismo de acción
de los bioestimulantes FLORUS© y BOOST© evaluados se encuentra más relacionado con la mejora de
los parámetros reproductivos, como el número de
frutos, que con la modificación de características
morfológicas como el tamaño.
Finalmente, desde el punto de vista agronómico, estos resultados son relevantes porque indican que la

Tabla 3. Predicción de cosecha de cada uno de los tratamientos.
Fecha

Tratamiento 1

Tratamiento 2

Tratamiento 3

Testigo

Total

7,651 kg

8,993 kg

10,805 kg

6,107 kg

Litros aplicados

3L de FLORUS©

3L de BOOST©

2L FLORUS©

0

2L de BOOST©
44

1L de BOOST©
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Tabla 4. Diámetro del fruto de cada uno de los tres tratamientos.
Diámetro del Tratamiento 1

Diámetro del Tratamiento 2

Diámetro del tratamiento 3

Diámetro del testigo

16 de mayo

2.15 cm

1.45 cm

2.0 cm

1.78 cm

17 de julio

4.55 cm

4.7 cm

4.8 cm

4.73 cm

23 de septiembre

6.73 cm

6.88 cm

6.78 cm

6.85 cm

Fecha

calidad comercial de los frutos, asociada a su tamaño, se mantiene constante independientemente del
tratamiento aplicado, lo que garantiza la uniformidad
del producto final mientras se obtienen mejoras significativas en otros aspectos del rendimiento.
Conclusiones
Los resultados de este estudio evidencian que la aplicación conjunta de bioestimulantes a base de microalgas FLORUS© y BOOST© en una proporción 2:1
representa una estrategia agronómica eficaz para
incrementar significativamente la productividad de la
naranja Valencia bajo condiciones semiáridas. El tratamiento combinado logró un aumento del 76% en la
producción total de frutos y una reducción del 75%
en el aborto, sin comprometer el diámetro final del
fruto. Este efecto sinérgico podría estar relacionado
con la acción conjunta de fitohormonas, aminoácidos
y compuestos bioactivos presentes en los extractos
de microalgas, que favorecen procesos clave como la
floración, el cuajado y la resistencia al estrés ambiental. La estabilidad de estos resultados a lo largo del
ciclo productivo resalta el valor de los bioestimulantes como herramientas sostenibles en citricultura.
Agradecimientos
Especial agradecimiento al Ingeniero Agrónomo Fitotecnista Mario Alberto Vasquez Flores perteneciente
al Fondo de aseguramiento agrícola Citricultores de
Nuevo León por su participación en la evaluación y
recopilación de datos.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

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Ronga, D., Biazzi, E., Parati, K., Carminati, D., Carminati, E., &amp;
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the source of bioenergy”: Microalgae in modern agriculture as a
biostimulant, biofertilizer, and anti-abiotic stress. Agronomy
(Basel, Switzerland), 11(8), 1610. https://doi.org/10.3390/
agronomy11081610
45

�Selaginella subg. Lepidophyllae,
Solo Ciencia

Descripción y Clave para su Identificación
Adrián González-Martínez1,2* y Susana Favela-Lara3
1

Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas,
Laboratorio de Biología de la Conservación y Desarrollo Sostenible-Laboratorio de Paleobiología.
2
Flora de Nuevo León (@floradenuevoleon).
3
Laboratorio de Ecología Molecular.
Ave. de los Rectores s/n, Cd. Universitaria, San Nicolás de los Garza, N.L. México. 66455.
*Autor para correspondencia: adrian.gonzalezmtz@uanl.edu.mx

Resumen
El género Selaginella P.Beauv. es uno de los más antiguos
y diversos entre las Licófitas. Desde las primeras descripciones formales de sus especies, se han propuesto distintas clasificaciones subgenéricas con base en caracteres
morfológicos y, en décadas recientes, datos genéticos y
moleculares. Selaginella subg. Lepidophyllae (Li Bing
Zhang &amp; X.M.Zhou) Weststrand &amp; Korall es caracterizado
por sus rosetas aplanadas y de textura coriácea, y son
plantas que habitan en zonas rocosas y áridas en los desiertos Chihuahuense, Sonorense y sus ecosistemas adyacentes. En su sentido estricto, el subgénero está compuesto por tres especies Selaginella lepidophylla (Hook. &amp;
Grev.) Spring, S. novoleonensis Hieron., y S. ribae Valdespino. La especie S. novoleonensis es la que más difiere
morfológicamente entre las tres, mientras que las diferencias morfológicas entre S. lepidophylla y S. ribae son escasas; comparten en gran medida sus preferencias de hábitat y crecen simpátricamente en buena parte de su rango.
Para este estudio se realizó una descripción a nivel subgenérico y con una clave para la determinación de las especies de estudio.
Palabras clave: selaginela, Licofitas, descripción
Abstract
The genus Selaginella P. Beauv. is one of the oldest and
most diverse among lycophytes. Since the first formal descriptions of its species, various subgeneric classifications
have been proposed based on morphological characters
and, in recent decades, genetic and molecular data. Sela46

ginella subg. Lepidophyllae (Li Bing Zhang &amp; X.M. Zhou)
Weststrand &amp; Korall is characterized by its flattened,
leathery-textured rosettes. It inhabits rocky and arid areas
in the Chihuahuan and Sonoran deserts and their adjacent
ecosystems. In its strict sense, the subgenus is comprised
of three species Selaginella lepidophylla (Hook. &amp; Grev.)
Spring, S. novoleonensis Hieron., and S. ribae Valdespino.
Among these, S. novoleonensis differs the most morphologically, whereas the morphological differences between
S. lepidophylla and S. ribae are minimal; these two species
share similar habitat preferences and grow sympatrically
across much of their range. This study includes a subgeneric-level description and a key for the identification of
the species under study.
Keywords: selaginela, Lycophytes, description,

Introducción
El género Selaginella es uno de los más antiguos aún
existentes en la Tierra, apareciendo durante el Devónico, hace aproximadamente 383 millones de años
(Klaus et al., 2017). Su mayor diversidad ocurre en
los trópicos, aunque se le encuentra también en hábitats áridos, templados y como parte de la flora alpina de numerosos picos en el mundo, desde el nivel
del mar hasta superar los 4000 msnm, en todos los
continentes con excepción de la Antártica (Jermy,
1990; Zhou y Zhang, 2015). A pesar de su ubicuidad,
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�su ecología ha sido poco estudiada (Tryon y Tryon,
1982).
Este género habría aprovechado la formación de
Pangea, el supercontinente más reciente que incluyó
a todas las masas continentales, para ampliar su distribución y explicando parcialmente su estatus cosmopolita en la actualidad.

Resultados y Discusión
Selaginella subg. Lepidophyllae (Li Bing Zhang &amp;
X.M.Zhou) Weststrand &amp; Korall, Am. J. Bot. 103(12):
2164 (2016)
Sinónimos: Selaginella subg. Ericetorum sect. Lepidophyllae Li Bing Zhang &amp; X.M.Zhou, Taxon 64(6):
1133 (2015)

Un ejemplo de su radiación evolutiva se encuentra
en la aparición temprana de Selaginella subg. Ericetorum (sensu Zhou et al., 2016), que engloba a los
subgéneros Lepidophyllae y Rupestrae (sensu Weststrand y Korall, 2016) hace aproximadamente 262 millones de años, en una Pangea dominada por climas
en extremo cálidos y áridos, a los que se adaptaron.

Diagnosis: “Species americanae Selaginellae rosulares, textura coriacea rigidaque. Caules prorsus foliosi,
involuti curvati statu inerte in forma sphaerica. Folia
anisophylorum, imbricatis, cum amplio margo albo
vel hyalino, et apices rotundis ad acutis. Rhizophorae
dorsales” González-Martínez (2023).

Estos subgéneros están bien representados en el Desierto Chihuahuense, los matorrales xerófilos y de las
praderas alpinas de México, además de otras regiones del mundo como los Andes, la cuenca Mediterránea y los desiertos del norte de África y el centro-sur
de Asia.

Plantas terrestres o rupícolas formadoras de rosetas
completamente planas en condiciones de humedad y
retraídas involutamente hasta formar una esfera en
estado de desecación, con textura coriácea y rígida
que las distingue fuertemente de otras especies arrosetadas como S. pilifera. Tallos extendidos, no articulados ni flageliformes, ramificados 2-3 veces, pubescentes a puberulentos. No forman estolones ni rizomas. Los rizóforos son producidos únicamente en la
base de los tallos y surgen de la cara dorsal de los
mismos.

Material y Métodos
Se colectaron ejemplares enteros con hojas vegetativas, rizóforos, raíces, estróbilos maduros e inmaduros y esporas en seis localidades de los estados de
Nuevo León y Coahuila (Figura 1).
Para la identificación de los especímenes recolectados, así como los depositados y digitalizados en diversos servidores en línea (Red de Herbarios del Noroeste de México, The Gray Herbarium (GH), Herbario Nacional de México- UNAM (MEXU) y el New York
Botanical Garden-Steere Herbarium (NY)) se utilizaron las claves proporcionadas por Mickel et al.
(2004).
Se realizó un registro fotográfico de caracteres morfológicos, descripciones para cada una de las especies, y una clave dicotómica para su identificación en
comparación con otras especies similares presentes
en la región norte de México.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

Tipo: Selaginella lepidophylla (Hook. &amp; Grev.) Spring

Hojas micrófilas imbricadas y oprimidas que cubren
por completo la longitud de los tallos, anisófilas,
arregladas en cuatro filas paralelas – dos laterales y
dos medias, y una hoja cubriendo los puntos de dicotomía (hojas axilares); orbiculares u ovadas a casi
deltoides; con márgenes gruesos de hasta 0.1 mm de
ancho, blancos a hialinos, dentados a largamente ciliados, con bases pubescentes a puberulentas; ápices
redondos a aristados o largamente acuminados; con
bases subcordadas a redondeadas; algunas veces con
idioblastos plateados a hialinos; adaxialmente verde
oscuro o claro en las hojas frescas, a pardas, doradas,
o marrón-rojizo en las hojas viejas; adaxialmente en
47

�Figura 1. Ubicación de recolección de los ejemplares utilizados en la descripción de Selaginella subg. Lepidophyllae
en el noreste de México. En círculos anaranjados, S. lepidophylla; en triángulos rosados, S. ribae; en rombos verdes,
S. novoleonensis

tonos dorados, pardos-verdosos, marrones a rojo
brillante; de 1-3.5 × 0.7-2 mm; hojas axilares de similares características al resto, simétricas y deltoides,
algunas veces con ápices truncados, exauriculadas.

dientemente unas de las otras. Microsporas triletes
en 2-3 filas dorsales, anaranjado brillante a rojoanaranjado, liberadas en tétradas dentro de una
membrana común, lisa a ondulada.

Estróbilos terminales, tetragonales, de 6-10 mm de
largo; esporófilas monomórficas, deltoides, aquilladas, de ápice agudo. Megasporas triletes en 2 hileras
ventrales, amarillo brillante a ligeramente pálido,
crestadas, reticuladas a estriadas, liberadas indepen-

En rocas y suelos sedimentarios, comúnmente calizos
a yesosos, en áreas de extrema aridez a relativamente alta humedad edáfica, como en rocas alrededor de
cascadas. Comúnmente asociadas a líquenes terrestres y epipétricos, musgos, helechos, orquídeas te-

48

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�rrestres y cactáceas en matorrales xerófilos, bosques
secos y pastizales; 100-2000 msnm. Raramente como
individuos aislados. Desde el suroeste de los Estados
Unidos de América hasta el sur de México; algunos
autores las han registrado en Centroamérica (El Salvador, Honduras). Se reconocen tres especies en el
subgénero (Figura 2).
Selaginella lepidophylla (Hook. &amp; Grev.) Spring in
Martius, Fl. Bras. 1(2): 126 (1840) [Figuras 3-4].

Basónimo: Lycopodium lepidophyllum Hook. &amp; Grev.,
Add. En. Filic. in Hook., Bot. Misc. 3: 106 (1833). Tipo:
Cerca de San Blas, Nayarit, México, Henry Dundas
s.n.
Lycopodium circinale Martens &amp; Galeotti (non-L.), L.
pallescens G. E. Smith (non Presl), L. nidiforme Herb.
(nom. nud.), Selaginella thoytsiana Curd, S.
leptophylla Eman Gay, S. rediviva Forrer ex Wittrock,
Lycopodioides lepidophylla (Hook. &amp; Grev.) O.
Kuntze.

“Densissime caespitosum, caule bi-tripinnato ubique
folioso, foliis arctissime imbricatis coriaceo-rigidis
obliquis late ovatis obtusis margine scariosis subtus

pallidis rufescentibus, stipulis folio simillimis” (Hooker
&amp; Greville, 1833, p. 106).
En rocas y suelos de origen calizo o yesoso, tanto en
zonas de extrema aridez como de relativa humedad
edáfica y principalmente con exposición norte. Se
asocia con helechos, cactáceas y musgos en matorrales xerófilos y pastizales; 100-2000 msnm; generalmente en grupos de 3-5 o más individuos, aunque se
pueden encontrar individuales. Desde el suroeste de
los Estados Unidos de América hasta el sur-sureste
de México, al oeste del Istmo de Tehuantepec.
Selaginella novoleonensis Hieron. in Engler &amp; Prantl,
Die Natür. Pflanzfam. 1(4): 676 (1902). Tipo: Sierra de
la Silla, cerca de Monterrey, Nuevo León, México,
Pringle #2489 [Figuras 5-6].
“Seitenb. und Mittelb. mit schief gestellter hyaliner,
sich später braun färbender Borstenspitze [S. novoleonensis] ist sehr nahe verwandt mit der vohergehenden [S. lepidophylla], aber robuster und unterscheidt sich auch durch die bis 5 mm breiten
(Seitenb. eingeschlossen), dorsiventralen Sprossglieder;
im
mexikanischen
Staate
NuevoLeon” (Hieronymus &amp; Sadebeck, 1902, p. 676).

1a.- Rosetas de textura coriácea, rígida……………………………………………………………………………………………..
2a.- Ápices aristados o largamente acuminados…..……………...

2

S. novoleonensis ⸙

2b.- Ápices redondeados a subagudos…………………………………………………………………….
3a.- Márgenes blancos, ápices mucronados a subagudos……

S. lepidophylla⸙

3b.- Márgenes hialinos, ápices redondeados a obtusos………

S. ribae ⸙

1b.- Rosetas de textura herbácea, suave…………………………………………………………………………………..……….
4a.- Rosetas laxas, ramas erectas, márgenes blancos………………...

3

4

S. pallescens*

4b.- Rosetas completamente planas, márgenes hialinos………………………………….…..
5a.- Ápices de las hojas largamente aristados…………………..……...

S. pilifera*

5b.- Ápices de las hojas redondeados a subagudos…………….…...

S. gypsophila*

5

Figura 2. Clave para las especies de Selaginella subg. Lepidophyllae ⸙ y especies similares no incluidas en este trabajo*
del Noreste de México y regiones adyacentes
PLANTA No. 31, Agosto 2025

49

�Figura 3. Selaginella lepidophylla, extendida. Rayones,
Nuevo León (González-Martínez, 2023)

Figura 5. Selaginella novoleonensis, extendida. Monterrey, Nuevo León (González-Martínez, 2023)

Figura 4. S. lepidophylla, retraída en forma de esfera.
Santa Catarina, Nuevo León (González-Martínez, 2023)

Figura 6. S. novoleonensis, retraída en forma de esfera.
Monterrey, Nuevo León (González-Martínez, 2023)

En rocas y suelos de origen calizo, con relativamente
alta humedad edáfica y principalmente con exposición norte. Se asocia con helechos, orquídeas y musgos en matorrales xerófilos y bosques secos; 5002000 msnm; generalmente como individuales o en
grupos pequeños. Se ha reportado desde la península de Baja California hasta Tamaulipas, de Sonora
hasta Guerrero. Se han encontrado observaciones en
la plataforma de ciencia ciudadana iNaturalist de individuos morfológicamente muy similares a S. novo-

leonensis en los límites de El Salvador y Honduras, los
cuales requieren de mayor confirmación.

50

Selaginella ribae Valdespino in Mickel &amp; Smith,
Mem. New York Bot. Gard. 88(1): 591. Tipo: Zumpango del Río, Guerrero, México; 38 km al sur de Iguala,
0.5 km al norte de Xalitla, en el camino a Acapulco,
Koch et al. 7987 [Figuras 7 y 8].
“Inter species rosulares Selaginellae, S. ribae apicibus
foliorum lateralium et medianorum rotundatis vel
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�late obtusis distincta” (Mickel et al., 2004, p. 591).
En rocas y suelos de origen calizo o yesoso, arcillosos
a limosos, principalmente con exposición norte, raramente en zonas de alta humedad edáfica. Se asocia
con helechos, cactáceas y magueyes en matorrales
xerófilos y pastizales; 600-1000 msnm; generalmente
en grupos de 3-5 a decenas de individuos, aunque se
pueden encontrar individuales. Se ha reportado desde Chihuahua hasta Tamaulipas, al sur hasta Guerrero y Oaxaca.

El subgénero Lepidophyllae presenta, en general, poca diferenciación morfológica entre sus especies
constituyentes. Esto ha causado numerosos casos de
confusión al momento de determinar ejemplares
dentro de este grupo, así como en otras especies
arrosetadas en México, donde convergen de siete a
ocho especies con estas características (Selaginella
acutifolia, S. convoluta, S. gypsophila, S. lepidophylla,
S. novoleonensis, S. pallescens, S. pilifera y S. ribae).
La especie S. novoleonensis es la que más diverge
entre las tres, con características muy claramente
diferenciables como los idioblastos plateados en casi
todas las hojas medias y la presencia de una arista
larga en todas las hojas. Por otro lado, la diferenciación entre S. lepidophylla y S. ribae puede llegar a
considerarse parte del espectro natural de variación
de las especies.

Figura 7. Selaginella ribae, extendida en cultivo. Apodaca, Nuevo León (González-Martínez, 2023)

Figura 8. S. ribae, retraída en forma de esfera. Santa Catarina, Nuevo León (González-Martínez, 2023)
PLANTA No. 31, Agosto 2025

Madrigal-González y Bedolla-García (2021) han expuesto, ante comentarios del autor de la especie, la
probabilidad de que S. ribae se trate de una variante
en el complejo específico de S. lepidophylla. Aunado
a esto, es común que los ejemplares sufran daños in
situ y ex situ. Por ejemplo, la pérdida de aristas en las
especies isófilas puede dificultar la determinación de
ejemplares preservados o frescos, y daños similares
ocurren comúnmente en ejemplares de otros grupos.
Estas circunstancias pueden afectar la probabilidad
de identificar positivamente ejemplares de S. ribae y
S. lepidophylla.

Ochoterena et al. (2020), han ubicado a S. ribae en
los suelos yesosos del Desierto Chihuahuense, condición que también comparte con S. lepidophylla,
dificultando así la diferenciación en cuestiones de
hábitat. Por estas razones, se considera necesario un
estudio molecular o genético que indague en las relaciones entre estas especies y otras similares, como S.
nothohybrida del centro y sur de México.
51

�Conclusiones

716. http://dx.doi.org/10.5962/bhl.title.4635

Las especies de Selaginella subg. Lepidophyllae presentan escasa diferenciación en su macromorfología.
Las descripciones y el registro fotográfico muestran
una gran afinidad entre las características de S. lepidophylla y S. ribae, sin descartar la probabilidad de
que se trate de variabilidad propia de una sola especie, para lo cual se requiere mayor investigación molecular y micromorfológica. Las observaciones correspondientes a las especies de este estudio en las plataformas de consulta en línea como iNaturalist y
GBIF presentan errores que sesgan el estudio de su
extensión y que requieren corrección. Aunado a esto,
los ejemplares depositados en diversos herbarios de
México y el extranjero merecen atención para su correcta determinación.

Hooker W.J., Greville R.K. (1833). Additions and Corrections to the Enumeratio Filicum, Part I. Lycopodinae.
Botanical
Miscellany.
3.
106.
https://
www.biodiversitylibrary.org/item/10541#page/1/
mode/1up

Se elaboró una clave para la identificación de las especies de Selaginella subg. Lepidophyllae, y otras especies formadoras de rosetas como S. pallescens, S.
pilifera y S. gypsophila (no incluidas en este trabajo
por pertenecer a otros subgéneros) del noreste de
México y regiones adyacentes para facilitar su reconocimiento.

Agradecimientos
Al Dr. Sergio Moreno Limón†, quien dirigió este estudio en sus primeras instancias y que junto al Dr. Jerzy
Rzedowski, Dr. Iván Valdespino y Dr. Sergio Salcedo
le dieron enfoque y forma.

Referencias
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Zhou X.M., Rothfels C.J., Zhang L., He Z.R., Le Péchon T.,
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lycophyte genus Selaginella (Selaginellaceae: Lycopodiopsida) based on plastid and nuclear loci. Cladistics 32(4):
360-389. https://doi.org/10.1111/cla.12136

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Solo Ciencia

Efecto de los Bioestimulantes Radix© y
Optimus© a Base de Microalgas sobre el
Rendimiento del Cultivo de Caña de Azúcar
L.A. Sumuano-Barragán 1 , F. Flores-García 1 y D.M. Garza-García 2
1

Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Agronomía.
Av. Francisco I. Madero S/N, Ex Hacienda el Canadá, 66050,
General Escobedo, N.L. México
2
Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas
Av. Pedro de Alba s/n, Cd. Universitaria, San Nicolás de los Garza, N.L. México. 66455
*Autor para correspondencia: misael.garzagr@uanl.edu.mx

Resumen
Las microalgas han emergido como una fuente prometedora de compuestos bioactivos con potencial en la agricultura sustentable gracias a su capacidad para sintetizar
aminoácidos, polisacáridos, vitaminas, antioxidantes y
fitorreguladores naturales. Se evaluó el efecto de dos bioestimulantes comerciales a base de microalgas (RADIX® y
OPTIMUS®) desarrollados por GEXUS© sobre el rendimiento y calidad del cultivo de caña de azúcar (Saccharum
officinarum var. LCP 85-384) bajo condiciones de campo
en el municipio de Tala, Jalisco, México. El experimento se
condujo durante la zafra 2023/2024 en un diseño comparativo con testigo sin tratamiento, aplicando tres dosis
sucesivas de ambos productos por drench. Se evaluaron
variables agronómicas como altura de planta, índice de
desarrollo, rendimiento de caña (t ha-1), contenido de fibra, sacarosa, °Brix , pureza del jugo y rendimiento de
azúcar. Los resultados mostraron que el tratamiento con
bioestimulantes incrementó la altura promedio
(206.77 ± 4.91 cm)
respecto
al
testigo
(185.77 ± 10.52 cm), aunque sin diferencia estadística significativa (p = 0.174). Sin embargo, sí se observaron diferencias significativas (p &lt; 0.05) en el peso por tallo
(6.47 ± 0.47 kg vs 3.97 ± 0.27 kg), índice de desarrollo
(0.65 ± 0.05 vs 0.40 ± 0.03) y rendimiento por hectárea
(121.42 ± 10.67 t ha-1 vs 63.56 ± 4.36 t ha-1), a favor del
tratamiento con los bioestimulantes de GEXUS ©. Estos
resultados evidencian que la aplicación de bioestimulantes a base de microalgas promueve mejoras significativas
en productividad sin comprometer la calidad del cultivo,
PLANTA No. 31, Agosto 2025

representando una estrategia que pueden ayudar a optimizar la producción cañera en regiones tropicales.
Palabras clave: Microalgas, bioestimulación, rendimiento,
caña de azúcar

Abstract
Microalgae have emerged as a promising source of bioactive compounds with potential for sustainable agriculture,
thanks to their ability to synthesize amino acids, polysaccharides, vitamins, antioxidants, and natural phytoregulators. This study evaluated the effect of two commercial
microalgae-based biostimulants (RADIX® and OPTIMUS®),
developed by GEXUS©, on the yield and quality of sugarcane (Saccharum officinarum var. LCP 85-384) under field
conditions in Tala, Jalisco, Mexico. Three foliar applications were conducted during the 2023/2024 growing season. Agronomic variables such as plant height, development index, cane yield (t ha-1), fiber content, sucrose, °
Brix, juice purity and sugar yield were evaluated. Results
showed that biostimulant application increased average
plant height (206.77 ± 4.91 cm) compared to the control
(185.77 ± 10.52 cm), although this difference was not statistically significant (p = 0.174). However, significant
differences (p &lt; 0.05) were observed in stalk weight
(6.47 ± 0.47 kg vs. 3.97 ± 0.27 kg), development index
(0.65 ± 0.05 vs. 0.40 ± 0.03), and cane yield
(121.42 ± 10.67 t/ha vs. 63.56 ± 4.36 t/ha) in favor of
treatment with GEXUS © biostimulants. These results
demonstrate that microalgae-based biostimulants can
significantly enhance productivity without negatively
53

�affecting crop quality, representing an effective and sustainable strategy for improving sugarcane production in
tropical agroecosystems.
Keywords: Microalgae, biostimulation, yield, sugarcane

Introducción
Uno de los mayores desafíos en la agricultura moderna es asegurar la sostenibilidad de los cultivos clave
para la economía global, como la caña de azúcar. Según proyecciones recientes, para el 2035, la demanda de este cultivo podría superar la producción debido a factores como el cambio climático y la degradación de los suelos (Flack-Prain et al., 2021). Esta problemática se agrava por el agotamiento de los recursos hídricos y la dependencia histórica de fertilizantes químicos, que han generado pérdida de biodiversidad edáfica, acidificación de los suelos y contaminación de acuíferos (Ganguly et al., 2021). En este
contexto, los bioestimulantes emergen como una
solución prometedora para mejorar la eficiencia
agronómica sin comprometer los ecosistemas.
Entre las alternativas más destacadas se encuentran
los bioestimulantes derivados de microalgas, ricos en
fitorreguladores, péptidos y nutrientes esenciales
que estimulan el crecimiento radical, la resistencia a
sequías y la absorción de nutrientes (Çakirsoy et al.,
2022). Su aplicación no solo incrementa los rendimientos, sino que también reduce la huella ambiental de la agricultura intensiva.
En países como México, Brasil e India, la caña de azúcar es un cultivo estratégico para la producción de
azúcar, etanol y energía renovable (López-Ortega et
al., 2021). Sin embargo, enfrenta presiones como
plagas emergentes, estrés térmico y suelos agotados.
En este estudio se evaluó el efecto de los bioestimulantes RADIX® y OPTIMUS®, desarrollados por
GEXUS©, pioneros en biotecnología de microalgas, en
plantaciones de caña del estado de Jalisco, México
(Miranda et al., 2024). El objetivo fue determinar su
impacto en variables de interés agronómicas, proponiendo así una alternativa viable para una industria
azucarera más sostenible.
54

Material y Métodos
Localización
El presente estudio se llevó a cabo en el Ejido Pequeña Propiedad Tala, en el Potrero San Lorenzo, ubicado en el municipio de Tala, Jalisco, México. Esta región presenta un clima cálido subhúmedo, caracterizado por lluvias en verano, altas temperaturas durante los meses de abril a junio, y una marcada estacionalidad en las precipitaciones.
El ensayo se realizó durante el ciclo 4 Resoca-2 correspondiente a la zafra 2023/2024. La fecha de aplicación de tratamientos fue el 29 de marzo de 2023,
con una superficie tratada de 1 hectárea.
La cosecha se efectuó el 22 de noviembre del 2023.

Datos del cultivo
El ensayo se llevó a cabo en caña de azúcar
(Saccharum officinarum) de la variedad LCP 85-384.
La plantación presentó una distancia entre surcos de
1.80 metros y una longitud de surco de 175 metros.
El diseño experimental incluyó 32 surcos por tratamiento.
Tratamientos
El tratamiento consistió en la aplicación de RADIX©,
un bioestimulante a base de microalgas que promueve el crecimiento de raíces, protege contra fitopatógenos y activa microorganismos benéficos en la rizosfera, y OPTMUS©, un bioestimulante de última generación formulado a base de microalgas y ácidos fúlvicos, que mejora las propiedades del suelo, optimiza
la absorción y asimilación de nutrientes (Figura 1).
Ambos productos son desarrollados por la empresa
GEXUS© con una dosis recomendada de 1L/H aplicada vía drench (Tabla 1). El diseño de campo, mostrado en el croquis, consistió en la comparación entre el
tratamiento de los productos de la empresa GEXUS©
y un testigo (sin tratamiento) separados por un callejón de riego, cada uno con 32 surcos (Figura 2).
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Diseño experimental y toma de datos
La evaluación se llevó a cabo mediante un muestreo
en tres sitios de 10 metros dentro de cada tratamiento, en los cuales se seleccionaron tallos de manera
aleatoria con el fin de evitar sesgos en la recolección
de datos. En cada sitio, los tallos fueron pesados para
estimar el rendimiento por unidad de superficie. La
altura de las plantas se midió manualmente utilizando una cinta métrica estándar.

Figura 1. Aplicación del bioestimulante RADIX© vía
drench.
32 surcos

Testigo

32 surcos
Callejón de

Tratamiento GEXUS

riego

Camino a las bodegas

Figura 2. Croquis de la distribución de los tratamientos
en el cultivo de caña de azúcar.

Evaluación de variables agronómicas
En el cultivo de caña de azúcar se evaluaron diversas
variables agronómicas para determinar el efecto de
los tratamientos aplicados. Estas incluyeron la altura
promedio de los tallos (expresada en centímetros) y
el índice de desarrollo, calculado como el producto
del número de tallos por la altura media, dividido
entre 100. Asimismo, se estimó el rendimiento de
caña en toneladas por hectárea, a partir del peso de
los tallos muestreados. Otras variables consideradas
fueron el porcentaje de humedad en hoja, el contenido de azúcares reductores en el tallo y el rendimiento en azúcar, expresado como el porcentaje de recuperación. Además, se determinó el rendimiento de
azúcar por hectárea, el contenido de fibra en el tallo
(porcentaje), la concentración de sacarosa en el jugo
de caña (porcentaje), °Brix"del jugo y la pureza del
jugo, calculada como la relación entre la sacarosa y
los sólidos solubles totales.

Tabla 1. Número de aplicaciones de los bioestimulantes RADIX© y OPTMUS©.
Aplicación

Producto

Dosis/ha

Fecha

Modo de aplicación

1ra

RADIX©

1L

29-mar-23

Drench en 200 L de agua

OPTMUS©

2L

RADIX©

1L

30-jun-23

Drench en 200 L de agua

OPTMUS©

1L

RADIX©
OPTMUS©

1L
1L

29-sep-23

Drench en 200 L de agua

2da

3ra

Drench: Método de aplicación agrícola que consiste en administrar una solución líquida directamente al suelo, en la zona radicular de
la planta, con el propósito de facilitar la absorción de nutrientes, bioestimulantes o productos fitosanitarios a través de las raíces. Tabla
2. Variables agronómicas de la caña de azúcar a partir de la aplicación de RADIX© y OPTMUS©.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

55

�Análisis estadístico
Los datos recolectados fueron procesados y analizados utilizando el software R (versión 4.3.1). Se aplicó
estadística descriptiva para calcular la media y el
error estándar (± EE) de cada variable evaluada en
ambos tratamientos. Para comparar los efectos del
tratamiento con bioestimulantes respecto al testigo,
se empleó la prueba t de Student para muestras independientes, considerando una varianza desigual
entre grupos y un nivel de significancia del 5% (p &lt;
0.05). Las variables con diferencias significativas fueron identificadas con letras distintas (“a” y “b”) para
facilitar su interpretación en las tablas.
Resultados y discusión
Los resultados presentados en la Tabla 2 muestran el
impacto en el desarrollo agronómico y el rendimiento de caña de azúcar a partir de la aplicación de los
bioestimulantes a base de microalgas de GEXUS© en
comparación con el tratamiento testigo (sin aplicación de bioestimulantes).
Parámetros agronómicos
Se establecieron como métricas clave para evaluar el
desempeño del cultivo la altura promedio de la planta, el índice de desarrollo, el rendimiento estimado
en toneladas de caña por hectárea y los parámetros
de calidad como porcentaje de fibra, sacarosa, °Brix",
pureza, azúcares reductores y rendimiento de azúcar
por hectárea. En cuanto al desarrollo de la planta, el
tratamiento con los bioestimulantes promovió un

incremento notable en la altura promedio de las
plantas, registrando 206.76 cm frente a los 185.76
cm del testigo, lo que representa un aumento del
11.3%. De manera similar, el índice de desarrollo
mostró un incremento significativo de 69.71 en el
tratamiento contra 54.62 en el testigo, indicando una
mayor biomasa aérea por unidad de superficie.
Rendimiento teórico de caña y azúcar
Respecto al rendimiento de caña por hectárea, el tratamiento con bioestimulantes alcanzó 121.25 t ha-1,
prácticamente duplicando el rendimiento del testigo
que fue de 64.16 t ha-1, es decir, un incremento del
89%. Este notable aumento sugiere que los bioestimulantes a base de microalgas no solo favorece el
crecimiento vegetativo, sino también la acumulación
de biomasa comercialmente relevante (Gonçalves,
2021).
Calidad de la caña
En los parámetros de calidad de caña, se observó una
ligera disminución en el contenido de humedad
(72.80% en el tratamiento vs 79.20% en testigo) y
fibra (11.70% frente a 12.20%), lo cual es positivo
para el procesamiento industrial de la caña, dado
que facilita la extracción de jugo y optimiza el rendimiento en fábrica.
La concentración de sacarosa fue ligeramente mayor
en el tratamiento con bioestimulantes (14.32%) frente al testigo (13.67%). Aunque se esperaría un incre-

Tabla 2. Variables agronómicas de la caña de azúcar a partir de la aplicación de RADIX© y OPTMUS©.
Rendimiento
de caña

Rendimiento
de azúcar

(t ha-1)

(t ha-1)

Testigo

64.16 ± 4.36

GEXUS©

121.25 ± 10.67

Tratamiento

56

RAT (%)

Humedad
(%)

Fibra (%)

Sacarosa
(%)

°Brix (%)

Pureza (%)

7.96 ± 0.55

12.41

79.20

12.20

14.32

16.69

85.83

14.08 ± 1.24

11.61

72.80

11.70

13.67

16.37

83.47

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�mento más marcado, esta diferencia se compensa
con el notable aumento en el volumen de caña producido. Adicionalmente, los °Brix" (16.37% en el tratamiento vs 16.69% en testigo) y la pureza del jugo
(83.47% frente a 85.83%) se mantuvieron en rangos
aceptables para la industria azucarera, sin afectaciones adversas relevantes.
Un aspecto relevante es el contenido de azúcares
reductores en el tallo, siendo 0.261 en el tratamiento
frente a 0.240 en el testigo. Aunque la diferencia es
ligera, esta tendencia es positiva para la calidad de la
caña en términos de eficiencia en la recuperación de
sacarosa.
En cuanto al rendimiento de azúcar, se observaron
resultados contundentes: el tratamiento con
GEXUS© logró 121.25 t ha-1, generando 14.08 toneladas de azúcar/ha, mientras que el testigo apenas alcanzó 7.96 toneladas de azúcar/ha, lo que representa un incremento del 77%.
El análisis estadístico descrito en la tabla 3 reveló que
el tratamiento con bioestimulantes a base de microalgas presentó diferencias significativamente superiores (p &lt; 0.05) en variables clave como el peso por

tallo, el índice de desarrollo y el rendimiento por
hectárea en comparación con el testigo. Estas diferencias reflejan un impacto fisiológico positivo del
tratamiento en la acumulación de biomasa útil y productividad industrial. Estudios recientes han reportado resultados similares, Tritean et al. (2025) demostraron que extractos de Chlorella sorokiniana incrementaron significativamente parámetros fisiológicos
en cultivos hortícolas; El-Zaidy et al. (2024) observaron una mejora significativa en la productividad y calidad de caña de azúcar con aplicaciones de Spirulina.
Estos resultados evidencian que la aplicación de los
bioestimulantes a base de microalgas de GEXUS©
contribuye significativamente al aumento del rendimiento y productividad de caña de azúcar sin afectar
de manera negativa los parámetros de calidad industrial. El incremento en biomasa, rendimiento de caña
y azúcar podría estar relacionado con la mejora en la
actividad fisiológica de las plantas, promovida por los
metabolitos activos de las microalgas, que estimulan
procesos como la fotosíntesis, el desarrollo radicular
y la eficiencia en la asimilación de nutrientes
(Gamma et al., 2025; EL Mernissi, &amp; EL Arroussi,
2025).

Tabla 3. Diferencias estadísticas entre las variables agronómicas de la caña de azúcar
a partir de la aplicación de RADIX© y OPTMUS©.
Variable

Testigo (media ± EE)

Letra

GEXUS© (media ± EE)

Letra

185.77 ± 10.52

a

206.77 ± 4.91

a

1.74 ± 0.12

a

1.99 ± 0.03

a

582.33 ± 56.64

a

675.00 ± 23.16

a

Peso 10 tallos (kg)

29.12 ± 2.83

a

33.75 ± 1.16

a

Peso por tallo (kg)

3.97 ± 0.27

b

6.47 ± 0.47

a

Índice de desarrollo

0.40 ± 0.03

b

0.65 ± 0.05

a

Rendimiento (t/ha)

63.56 ± 4.36

b

121.42 ± 10.67

a

Altura (cm)
Diámetro (cm)
Población

PLANTA No. 31, Agosto 2025

57

�Conclusiones
Los bioestimulantes a base de microalgas de
GEXUS©, demostraron ser altamente efectivos para
mejorar el desarrollo, el rendimiento de caña y el
rendimiento teórico de azúcar en caña de azúcar de
la variedad LCP 85-384.

j.energy.2021.121056

Los incrementos obtenidos en la producción de biomasa y azúcar, junto con el mantenimiento de la calidad industrial de la caña, posicionan a los bioestimulantes de GEXUS© como una herramienta viable para optimizar la rentabilidad de los sistemas de producción cañera y abren nuevas oportunidades para
su implementación en programas de manejo agrícola
sustentable.

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j.algal.2021.102200

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Solo Ciencia

Morfoanatomía Foliar del Huizache
Vachellia farnesiana (L.) Wright y Arn.
Marco A. Alvarado-Vázquez*, Alejandra Rocha-Estrada y Sergio M. Salcedo-Martínez

Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas
Av. Pedro de Alba s/n, Cd. Universitaria, 66455
San Nicolás de los Garza, N.L. México.
*Autor para correspondencia: marco.alvaradovz@uanl.edu.mx

Resumen
Se describe la morfología y anatomía de los foliolos de
Vachellia farnesiana, destacando características de adaptación a hábitats áridos y semiáridos; esto mediante técnicas de maceración, transparentación e histología en parafina. Encontrando que la hoja del huizache presenta características que la hacen particularmente adaptable a los
ambiente áridos y semiáridos, tales como hojas relativamente pequeñas, gruesas, algo revolutas, cutícula gruesa
y con estriaciones cuticulares, principalmente en el haz;
abundancia de tricomas en ambas superficies, más desarrollados en el envés; mesófilo con distribución isolateral,
con dos capas de empalizada hacia el haz y una hacia el
envés; estomas sólo en el envés, no muy abundantes y de
forma casi circular.
Palabras clave: huizache, hojas, foliolos, tricomas, parénquima empalizada, parénquima esponjoso, Nuevo León,
México

Abstract
The morphology and anatomy of Vachellia farnesiana leaflets are described, highlighting adaptive
characteristics to arid and semi-arid habitats using
maceration, translucency, and paraffin histology
techniques. The huizache leaf is found to have characteristics that make it particularly adaptable to arid
and semi-arid environments, such as relatively small,
thick, somewhat revolute leaves, thick cuticle with
PLANTA No. 31, Agosto 2025

cuticular striations, mainly on the upper surface;
abundant trichomes on both surfaces, more developed on the underside; mesophyll with isolateral distribution, with two palisade layers on the upper surface and one on the underside; stomata only on the
underside, sparse and almost circular in shape.
Keywords: huizache, leaves, leaflets, trichomes, palisade
parenchyma, spongy parenchyma, Nuevo León, Mexico

Introducción
Las principales zonas áridas y semiáridas del mundo
se distribuyen a lo largo de 2 cinturones que pasan
por los trópicos de Cáncer y Capricornio, comprendiendo una superficie de 28 millones de km2 equivalente al 19% de la superficie total del planeta
(Foroughbakhch et al., 1994), en México ocupan más
de 90 millones de hectáreas más del 40% del territorio nacional (Zerecero Leal, 1981).
Una de las especies que vive en las zonas áridas y semiáridas es V. farnesiana (Fabaceae), conocido comúnmente como huizache, es una planta de la cual
se puede obtener harina, miel, goma, carbón, tiene
uso medicinal, artesanal, forrajero y ornamental
(Alvarado Vázquez, 1997; Rocha Estrada et al., 1998;
59

�Villarreal Quintanilla y Estrada Castillón, 2008; Reséndiz Flores et al., 2016; Pérez Cruz et al., 2022; Magaña Magaña et al., 2023). Por otro lado, la familia Fabaceae ha sido objeto de estudio por varios investigadores, entre los cuales destacan Metcalfe y Chalk
(1950), quienes describen la morfología y anatomía
de los órganos vegetativos de las leguminosas; por su
parte Barrientos Ramírez et al. (2012), evalúan las
características del fruto del huizache para su posible
uso en curtiduría o alimentación animal.
Biradar y Rachetti (2013), realizaron extracción de
metabolitos en cromatografía de capa fina de diferentes partes de la acacia, esto con la finalidad de ser
aplicados en el área de salud. Erkovan et al. (2016),
hacen una revisión general de esta especie considerando la descripción, su biología general y usos; así
como las interacciones bióticas y abióticas en el manejo de la dinámica de la población y comunidad.
Material y métodos

El material vegetal se colectó en el municipio de China, Nuevo León, entre los paralelos 25o28´y 25o26´de
latitud norte y los meridianos 99o17´y 99o15 de longitud oeste, y se encuentra en la Provincia de la Planicie Costera del Golfo dentro de la Región Xerofítica
Mexicana (Rzedoswski, 1981). El clima es semiseco
cálido CBS, (h´) hx´ (García, 2004); la precipitación
media anual es del orden de los 500 mm (INEGI,
1986). De acuerdo con las cartas de vegetación de
DETENAL (1978), la vegetación es del tipo matorral
espinoso tamaulipeco.
Se colectaron muestras de 5 plantas de V. farnesiana
(Figura 1), los ejemplares están depositados en el
herbario de la Facultad de Ciencias Biológicas (UNL).
Se tomaron muestras de hoja de las 5 plantas
(seleccionándose hojas adultas y con una madurez
adecuada), se les aplicaron las técnicas de maceración con los métodos de Jeffrey y Schultz (Curtis,
1986), transparentación con los métodos de Foster y
60

Figura 1. Huizache V. farnesiana, mostrando sus hojas,
foliolos y flores amarillas en cabezuelas

Dizeo Strittmater (D’Ambrogio de Argüeso, 1986) y
cortes en parafina de acuerdo con Johansen (1940).
Cada una de estas técnicas permitió conocer diferentes aspectos de la morfología y anatomía foliar del
huizache, además se realizaron 50 mediciones para
cada tipo de célula o tejido.
Los criterios para la descripción de los tejidos fueron
básicamente los de Metcalfe y Chalk (1950) y Radford et al., (1974). Para los patrones de nerviación se
utilizó la clasificación de Hickey (1973), para los estomas se siguió a Baranova (1992).

Resultados y Discusión
Morfología
Hojas compuestas, 3-8 cms de longitud, 2-6 pares de
pinnas. Foliolos numerosos, de forma linear oblonga,
color gris verdoso, 2-3.9 mm de longitud y 0.6-1.1
mm de ancho; foliosos glabros excepto por unos pocos tricomas simples en los bordes inferiores (Tabla
1, Figura 2d).
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Figura 2. Vachellia farnesiana (L.) Wight y Arn. a, morfología y nerviación del foliolo; b, corte transversal del foliolo; c,
epidermis del haz y envés; d, tricoma; e, cristales de oxalato de calcio; f, corte transversal del peciolo; g, vaso helicoidal;
h, células del parénquima del xilema; i, macroesclereidas; j, fibra; k, braquiesclereidas; l, traqueidas helicoidales; m, vaso escalariforme.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

61

�Tabla 1. Valores promedio (± Desviación Estándar), máximos y mínimos de variables morfoanatómicas estudiadas en los
foliolos del huizache.
Media ± D.E. (µm)

Máx. (µm)

Mín. (µm)

Longitud del foliolo (mm)
Ancho del foliolo (mm)

2.60±0.35
0.89±0.13

3.90
0.60

2.00
1.10

Grosor del foliolo (mm)
Grosor de cutícula en haz

224.85±48.53
4.15±1.13

353.85
6.40

141.54
2.56

Grosor de cutícula en envés
Longitud de células tabulares en haz

4.40±1.05
38.25±8.87

5.12
64.00

2.56
23.04

Longitud de células tabulares en envés
Ancho de células tabulares en haz

22.63±3.89
19.61±3.44

30.72
25.60

15.36
12.80

Ancho de células tabulares en envés
Altura de células epidérmicas en el haz

12.29±2.31
12.46±1.42

17.92
15.36

7.68
10.24

Altura de células epidérmicas en el envés
Longitud de células epidérmicas de la nervadura

9.32±1.20
31.85±3.68

11.52
37.12

7.68
25.60

Ancho de las células epidérmicas de la nervadura
Longitud de células oclusivas en el haz
Ancho de células oclusivas en el haz

13.67±1.15
15.05±1.40
13.88±0.88

15.36
17.92
15.36

12.80
12.80
12.80

Longitud de células oclusivas en el envés
Ancho de células oclusivas en el envés

20.28±3.28
12.85±2.35

28.16
15.36

15.36
7.68

Número de estomas/mm 2 en el haz
Número de estomas/mm 2 en el envés

162.00±35.47
171.60±35.08

220.00
230.00

9.00
100.00

Longitud de tricomas
Ancho de tricomas

87.45±21.48
10.29±2.26

128.00
15.36

64.00
7.68

Longitud de células de parénquima empalizada
Ancho de células de parénquima empalizada

43.73±6.48
7.73±1.59

53.76
10.24

35.84
5.12

Longitud de células de parénquima esponjoso
Ancho de células de parénquima esponjoso

15.46±3.32
10.39±2.23

23.04
15.36

10.24
7.68

Longitud de céls. de parénquima no fotosintético del xilema
Ancho de céls. de parénquima no fotosintético del xilema

47.10±14.89
15.57±4.73

97.28
28.16

23.04
10.24

324.33±160.57
10.09±2.77

788.58
17.92

131.43
5.12

28.37±5.58
16.69±4.19

43.52
30.72

20.48
7.68

Longitud de macroesclereidas
Ancho de macroesclereidas
Longitud de vasos escalariformes

32.41±6.78
12.60±1.21
154.52±41.87

48.64
15.36
230.40

20.48
10.24
64.00

Ancho de vasos escalariformes
Longitud de vasos helicoidales

53.97±22.74
211.87±63.67

120.32
422.40

20.48
79.36

Ancho de vasos helicoidales
Longitud de traqueidas helicoidales

11.93±2.39
141.41±40.09

17.92
230.40

7.68
79.36

Ancho de traqueidas helicoidales
Número de cristales/mm 2
Diámetro de cristales

15.51±3.51
389.60±23.00
10.96±1.81

23.04
420.00
12.80

7.68
350.00
7.68

Variable

Longitud de fibras
Ancho de fibras
Longitud de braquiesclereidas
Ancho de braquiesclereidas

62

PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Venación tipo camptódroma, llegando a ser casi eucamptódroma ya que los nervios secundarios se van
haciendo menos conspicuos hacia el margen y se interconectan con otros sin formar arcos visibles, pero
algunas ramificaciones terminan libremente, además
de presentar pocas venas secundarias (Tabla 1, Figura 2a).
El foliolo es grueso con un espesor de 224.85 µm, a
este respecto Smith y Nobel (1978) mencionan que el
grosor está relacionado con las altas temperaturas,
ya que estas favorecen la formación de hojas más
pequeñas y gruesas.

Epidermis
Esta es uniestratificada, con un grosor en el haz de
12.29 µm, en el envés es ligeramente más delgada, la
cutícula tiene un grosor promedio de 4.15 µm en el
haz y 4.40 µm en envés (Tabla 1, Figura 2b). Las células
tabulares son poliédricas de 4-7 lados, similares en forma en el haz y envés, aunque más grandes en el haz
(38.25 µm) que en el envés (22.63 µm).
Los estomas se presentan en ambas superficies, son
principalmente de tipo paracítico (Figura 2c), aunque
hay algunos de apariencia anomocítica, las células subsidiarias son de tamaño algo menor a las tabulares.
Cabe mencionar que algunas de las subsidiarias presentan divisiones transversales u oblicuas, lo que da un
mayor número de células anexas. Las células oclusivas
en el haz tienen una longitud promedio de 15.05 µm y
una anchura de 13.88 µm, en tanto que en el envés
miden 20.28 µm y 12.85 µm de ancho y largo, respectivamente. Con respecto al número de estomas tenemos que en el haz hay 162 estomas /mm2 y en el envés 171.60 estomas/mm2 (Tabla 1).

Mesófilo
Parénquima en arreglo isolateral, es decir, parénqui-

PLANTA No. 31, Agosto 2025

ma en empalizada hacia ambos lados y esponjoso en
el centro (Figura 2b). El parénquima en empalizada
presenta células delgadas y alargadas con arreglo
muy compacto 3-4 capas de células hacia cada lado,
aunque el conjunto de capas del haz es más grueso.
Las células de empalizada tienen una longitud promedio de 43.73 µm y un ancho de 7.73 µm. El parénquima esponjoso está restringido a una banda muy
angosta en el centro del foliolo, tiene una estructura
compacta y sin espacios aéreos; sus células son algo
redondas con 15.46 µm de longitud y 10.39 µm de ancho. Se sabe que la hoja de tipo isolateral y el aumento en la cantidad o número de capas de tejido de empalizada son características típicas xeromórficas (Hull
y Bleckman, 1977; Bokhari y Hedge, 1977; Fahn,
1978; Rudall, 1979 y 1980; Johonson, 1980). No se
presenta colénquima o parénquima no fotosintético
alrededor de los haces vasculares.

Haces vasculares

Se aprecia un haz vascular central y haces secundarios en poca cantidad (Figura 2b), la disminución en
el número de haces principales ha sido reconocido
por Dehgan (1982) como una adaptación en las plantas de zonas áridas para economizar agua, por su
parte Smith y Nobel (1986) mencionan que existe
una relación lineal entre el área superficial de la hoja
y el número de haces vasculares, por lo que si las xerófitas tienden a disminuir el tamaño de sus hojas es
de esperarse que también disminuya el número de
haces principales.
El xilema se encuentra orientado hacia el haz y el
floema hacia el envés. Además, existe hacia afuera
del xilema y floema casquetes de fibras. La porción
xilema-floema es aproximadamente 1:1, el haz vascular está rodeado por una vaina de células parenquimáticas, estas células presentan un contenido oscuro y muchas de ellas tienen cristales de tipo rom63

�boédrico, de una longitud promedio de 10.96 µm
(Tabla 1, Figura 2e). Se aprecia también la presencia de
macroesclereidas (Figura 2i), cuya longitud es de 32.41
µm y braquiesclereidas (28.37 µm de longitud, Figura
2k). Los vasos son del tipo helicoidal y escalariforme
(Figura 2g y m), los helicoidales tienen una longitud
mayor (211.87 µm) que los escalariformes (154.42
µm); los escalariformes son escasos, lo mismo que las
braquiesclereidas y macroesclereidas.
Además de estos elementos conductores encontramos
traqueidas helicoidales no muy abundantes (141.41
µm de longitud y 15.51 µm de ancho, Figura 2l). Las
fibras son de paredes gruesas, pocas punteaduras y
una longitud de 324.33 µm (Figura 2j). Células de parénquima poco abundantes.

Peciolo
En sección transversal tiene una forma cilíndrica, con
un profundo canal en la parte superior, formando
dos alas (Tabla 1, Figura 2f). La epidermis y cutícula
son similares a las de los foliolos, prácticamente es
glabro.
El pecíolo presenta un haz vascular central y dos secundarios localizados en las alas. En el haz el xilema
se encuentra ubicado en el centro del haz vascular
central y alrededor se encuentra el floema, el cual es
atravesado por 5-6 brazos de xilema que nacen del
centro. Hacia afuera del xilema y floema se encuentran anillo de 2-3 capas de fibras y alrededor una capa de células parenquimáticas que contienen en su
mayoría cristales de oxalato de calcio, romboédrica.
Los haces secundarios son similares excepto que el
xilema no tiene brazos. En las capas de parénquima
adyacentes a la epidermis, muchas células parenquimáticas tienen cristales romboédricos, aunque algunas otras tienen de tipo macla.

64

Conclusiones
La morfoanatomía de las hojas del huizache presentaron características que les permiten ser adaptables
a los ambientes áridos y semiáridos, tales como foliolos pequeños y gruesos, cutícula gruesa principalmente en el haz, abundantes tricomas en ambas epidermis, mesófilo isolateral y estomas sólo en la epidermis abaxial.

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PLANTA No. 31, Agosto 2025

65

�Solo Ciencia

Evaluación Agronómica de Florus© y
Boost© en la Productividad y Calidad Fitosanitaria de Papaya (Carica papaya L.)
L.A. Sumuano-Barragán1, F. Flores-García1 y D.M. Garza-García2*
1

Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Agronomía.
Av. Francisco I. Madero S/N, Ex Hacienda el Canadá, 66050,
General Escobedo, N.L. México
2
Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas
Av. Pedro de Alba s/n, Cd. Universitaria, San Nicolás de los Garza, N.L. México. 66455
*Autor para correspondencia: misael.garzagr@uanl.edu.mx

Resumen
El presente estudio evalúa el impacto de bioestimulantes
a base de microalgas sobre la fisiología reproductiva, sanidad vegetal y calidad del fruto en el cultivo de papaya
(Carica papaya L.) en condiciones tropicales de Tapachula,
Chiapas. Frente a los desafíos del cambio climático y el
uso excesivo de agroquímicos, los bioestimulantes FLORUS© y BOOST© —formulados por la empresa mexicana
GEXUS©— fueron aplicados como alternativa sostenible.
FLORUS© promueve la floración, mientras que BOOST©
fortalece la resistencia sistémica adquirida (SAR, por sus
siglas en inglés). El ensayo se condujo en una hectárea de
papaya híbrida, con aplicaciones foliares quincenales de
FLORUS© y BOOST© desde la prefloración hasta la cosecha, totalizando 14 y 18 aplicaciones respectivamente. Las
variables evaluadas incluyeron el número y tipo de flores,
el amarre de frutos, incidencia de enfermedades y calidad
postcosecha. Los resultados demuestran que los bioestimulantes mejoraron la eficiencia reproductiva, redujeron
la presencia de enfermedades y contribuyeron a una mejor sanidad y firmeza del fruto, evidenciando el potencial
de las microalgas como herramienta clave en la agricultura resiliente y sostenible.
Palabras clave: Microalgas, bioestimulante, agricultura,
papaya

Abstract
This study evaluates the impact of microalgae-based biostimulants on reproductive physiology, plant health, and
fruit quality in papaya (Carica papaya L.) crops grown un66

der tropical conditions in Tapachula, Chiapas. Faced with
the challenges of climate change and the excessive use of
agrochemicals, the biostimulants FLORUS© and
BOOST©—formulated by the Mexican company GEXUS©—were applied as a sustainable alternative. FLORUS© promotes flowering, while BOOST© strengthens
systemic acquired resistance (SAR). The trial was conducted on one hectare of hybrid papaya, with biweekly foliar
applications of FLORUS© and BOOST© from preflowering to harvest, totaling 14 and 18 applications, respectively. The variables evaluated included the number
and type of flowers, fruit set, disease incidence, and postharvest quality. The results demonstrate that the biostimulants improved reproductive efficiency, reduced disease
incidence, and contributed to improved fruit health and
firmness, highlighting the potential of microalgae as a key
tool in resilient and sustainable agriculture.
Keywords: Microalgae, biostimulant, agriculture, papaya

Introducción
Uno de los principales desafíos de la agricultura contemporánea es asegurar la productividad de los cultivos sin comprometer los recursos naturales ni la salud del ecosistema. Este reto se vuelve aún más apremiante ante el impacto creciente del cambio climático, que intensifica los eventos extremos como sequías, altas temperaturas y brotes de enfermedades,
poniendo en riesgo la seguridad alimentaria global
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�(Malhi et al., 2021). Aunado a esto, los sistemas agrícolas convencionales, basados en el uso intensivo de
agroquímicos, están generando una degradación
acelerada de los suelos, pérdida de biodiversidad microbiana y una creciente dependencia externa de
insumos costosos (Mitra et al., 2021).
En este contexto, el uso de bioestimulantes representa una alternativa prometedora para transitar hacia sistemas agrícolas más sostenibles, eficientes y
resilientes. Dentro de esta categoría, los bioestimulantes formulados a partir de microalgas han demostrado un alto potencial debido a su contenido de
compuestos bioactivos como aminoácidos, fitorreguladores, antioxidantes, polisacáridos y vitaminas, los
cuales promueven el crecimiento vegetal, mejoran la
fisiología del cultivo y fortalecen su resistencia frente
a factores de estrés biótico y abiótico (Kapoore et al.,
2021). Su aplicación ha sido particularmente relevante en cultivos frutales de alto valor comercial, donde
los efectos benéficos se reflejan en mayor floración,
mejor amarre de frutos, reducción de enfermedades
y mejor calidad postcosecha.
La papaya (Carica papaya L.) es uno de los cultivos
tropicales más importantes en México, ocupando
una posición estratégica tanto en el consumo nacional como en la exportación hacia mercados como
Estados Unidos y Canadá. Estados como Chiapas, Oaxaca y Veracruz lideran la producción nacional, representando una fuente significativa de ingresos y
empleo rural. Sin embargo, este cultivo enfrenta importantes desafíos fitosanitarios y ambientales, como
la alta incidencia de enfermedades virales y fúngicas,
así como la vulnerabilidad frente a las variaciones
climáticas, lo que compromete la estabilidad de la
producción (Vázquez et al., 2023).
Ante este panorama, se plantea el uso de bioestimulantes a base de microalgas como una herramienta
viable para mejorar la eficiencia productiva y la sanidad del cultivo de papaya, contribuyendo además a
fortalecer su resiliencia frente a los efectos del cambio climático. En el presente estudio se evaluó el impacto de la aplicación de los bioestimulantes FLOPLANTA No. 31, Agosto 2025

RUS© y BOOST©, desarrollados por GEXUS©, empresa mexicana de agrobiotecnología especializada
en el aprovechamiento de microalgas para el sector
agrícola (Miranda et al., 2024). El objetivo fue analizar su efecto en el desarrollo reproductivo, la sanidad vegetal y la calidad del fruto en un cultivo de papaya ubicado en el municipio de Tapachula, Chiapas,
como parte de una estrategia orientada a migrar hacia prácticas agrícolas más sostenibles y resilientes.
Materiales y métodos
Localización
El presente ensayo se realizó en el rancho “Aquiles
Serdán”, ubicado en el municipio de Tapachula, Chiapas, México. La zona se caracteriza por un clima tropical húmedo con temperaturas que oscilan entre los
22 °C y 34 °C, y una temporada de lluvias marcada
entre los meses de junio y octubre. El ciclo agrícola
evaluado corresponde al segundo semestre del año
2022.
Datos del cultivo
El estudio se llevó a cabo en una superficie de 1 hectárea sembrada con papaya híbrida, utilizando un
diseño de plantación convencional para la zona. El
trasplante se realizó en condiciones de campo abierto con manejo agronómico estándar para el cultivo
comercial de papaya.
Tratamiento
Los tratamientos consistieron en la aplicación foliar
de dos productos desarrollados por GEXUS©: FLORUS© y BOOST©. FLORUS© es un bioestimulante
diseñado para inducir e incrementar la calidad de la
floración, mientras que BOOST© actúa como activador del sistema de resistencia sistémica adquirida
(SAR, por sus siglas en ingles) y promotor del desarrollo fisiológico.
Ambos productos se aplicaron en solución foliar,
mezclando 500 mL por hectárea en 200 litros de
agua, a partir de la etapa de prefloración (40–45 días,
67

�después del trasplante) y continuando hasta la etapa
de cosecha (110-180 días, después del trasplante),
con una frecuencia de aplicación quincenal.

del “verano estéril”, fenómeno asociado a periodos
de baja floración o pérdida de sincronía reproductiva
(Tabla 1).

El número de aplicaciones y el volumen total aplicado de FLORUS© fue de 14 ocasiones, con una dosis
acumulada de 7 litros, mientras que BOOST© se aplicó en 18 ocasiones, alcanzando un volumen total de
9 litros.

En la etapa de amarre, el tratamiento con bioestimulantes mostró un incremento del 19.2% en el número
de frutos amarrados por planta, siendo esta diferencia estadísticamente significativa (p &lt; 0.05). Este resultado destaca el efecto positivo de los bioestimulantes en el sostenimiento hormonal del fruto y su
posible influencia en la translocación de fotoasimilados (Barreto et al. 2023).

Diseño experimental y toma de datos
Para la evaluación se seleccionaron de forma aleatoria plantas distribuidas en diferentes puntos de la
hectárea tratada, con el fin de garantizar una representación homogénea del cultivo. Las mediciones
agronómicas de floración y amarre se realizaron durante 17 semanas desde el 26 de junio hasta el 22 de
octubre del 2023, las evaluaciones fitosanitarias se
realizaron desde el 20 de diciembre del 2023 hasta el
20 de enero del 2024. Adicionalmente, el 20 de
enero de 2024 se evaluó la calidad del fruto en postcosecha mediante la determinación del porcentaje
de incidencia de antracnosis en una muestra aleatoria de 40 frutos.
Resultados y discusión
Parámetros fisiológicos del desarrollo reproductivo
Se establecieron como métricas clave para evaluar el
desempeño fisiológico del cultivo la cantidad y calidad de las flores, la eficiencia en el amarre de frutos
y la incidencia de anomalías reproductivas como flores abortadas, deformes o el fenómeno del "verano
estéril".
En cuanto al desarrollo floral, el tratamiento con bioestimulantes promovió un incremento del 4.6% en el
número total de flores por planta en comparación
con el testigo. Además, se observó una reducción del
36% en la aparición de flores tipo “chilillo” (flores no
viables) y una disminución del 15% en flores deformes, lo que sugiere una mejora en la expresión genética y hormonal del cultivo. Uno de los hallazgos más
relevantes fue la reducción del 36% en la incidencia
68

Sanidad vegetal en planta
Para la sanidad en campo se consideraron la incidencia de enfermedades virales, deformaciones morfofisiológicas del follaje (peciolos curvos o rallados) y
daños en el cogollo (arrepollamiento), tal como se
muestra en la Figura 1.
En el tratamiento testigo se reportó el derribo de 7
plantas por afectación viral, mientras que en el tratamiento con GEXUS© no se registraron bajas atribuibles a virosis. Asimismo, la incidencia de peciolos curvos y/o rallados fue cinco veces menor en el tratamiento, registrándose únicamente 23 plantas afectadas frente a 119 en el testigo. Se observó también
una reducción del 0.7% en el arrepollamiento del cogollo, indicativo de un mejor desarrollo apical y fisiología vegetal más estable (Tabla 2).
Estos resultados sugieren un efecto inmunomodulador de los bioestimulantes, posiblemente asociado a
la activación de mecanismos de defensa inducida y
mejora en la integridad celular bajo condiciones de
estrés biótico (Berthon et al., 2021).
Sanidad del fruto en planta y postcosecha
La incidencia de enfermedades en fruto fue evaluada
tanto en campo como en etapa postcosecha. Durante el desarrollo en planta, el número promedio de
frutos enfermos fue de 4.16 por planta en el tratamiento, frente a 5.25 frutos en el testigo a partir de
una muestra de 80 plantas, diferencia que resultó
estadísticamente significativa (p &lt; 0.05).
PLANTA No. 31, Agosto 2025

�Tabla 1. Promedio del número de flores por planta de papaya, clasificado por tipo de flor.
No.
Semana

Fecha

Testigo
HP

Gexus
HP

Testigo
CH

Gexus
CH

Testigo
DF

Gexus
DF

Testigo
EV

Gexus
EV

Testigo
AB

Gexus
AB

1

26 jun – 2 jul

0.68

0.58

0.08

0.00

0.30

0.00

0.00

0.00

2.15

2.30

2

03 – 09 jul

2.18

1.55

0.32

0.02

0.12

0.13

0.13

0.07

0.62

1.30

3

10 – 16 jul

1.68

1.28

0.00

0.00

0.38

0.23

0.10

0.02

0.50

1.28

4

17 – 23 jul

1.98

1.82

0.00

0.00

0.25

0.13

0.00

0.00

0.45

0.85

5

24 – 30 de jul

3.30

2.27

0.03

0.00

0.05

0.30

0.00

0.00

0.78

0.98

6

31 jul – 6 ago

3.03

3.27

0.00

0.05

0.08

0.10

0.00

0.00

2.00

0.40

7

07 – 13 ago

3.05

3.20

0.03

0.03

0.05

0.10

0.00

0.00

0.08

0.78

8

14 – 20 ago

1.83

1.93

0.00

0.07

0.40

0.03

0.00

0.00

0.08

1.45

9

21 – 27 ago

0.37

0.48

0.00

0.00

0.12

0.08

0.00

0.00

1.98

2.50

10

28 ago –3 sep

0.63

0.92

0.00

0.02

0.00

0.00

0.00

0.00

2.40

2.52

11

4 – 10 sep

2.00

1.53

0.00

0.00

0.00

0.33

0.00

0.00

1.62

1.67

12

11 – 17 sep

2.35

1.38

0.00

0.00

0.35

0.35

0.00

0.00

1.35

1.85

13

18 – 24 sep

2.22

1.70

0.00

0.00

0.27

0.27

0.00

0.00

0.66

1.38

14

25 sep – 01 oct

3.67

3.07

0.00

0.00

0.00

0.05

0.00

0.00

1.00

1.22

15

02 – 08 oct

2.17

2.55

0.07

0.02

0.07

0.02

0.00

0.00

0.82

1.05

16

09 – 15 oct

2.97

2.33

0.02

0.00

0.05

0.00

0.00

0.00

1.25

2.38

17

16 – 22 oct

1.80

2.38

0.03

0.00

0.00

0.00

0.02

0.00

1.80

2.97

HP= Flores hermafroditas; CH = Chilillo; DF= deformes; EV = Estéril de verano y AB = Aborto

PLANTA No. 31, Agosto 2025

69

�b

a

Figura 1. a) Peciolo curvo y b) Arrepollamiento del cogollo en planta de papaya

Tabla 2. Sanidad de las plantas.
Variable

GEXUS

Testigo

Firmeza

1.50

7.76

°Brix

10.00

10.30

% Frutos con
antracnosis

0.26

0.33

En etapa postcosecha, particularmente en condiciones de alta humedad ambiental, se reportó una reducción del 15% en la incidencia de antracnosis en
frutos provenientes del tratamiento con bioestimulantes. Esta disminución tiene un impacto directo en
la reducción de mermas comerciales y mejora la vida
útil del producto (Tabla 3).

Calidad física del fruto
Se incluyeron como variables de calidad el peso, volumen y densidad promedio del fruto cosechado. Si
70

bien el peso y volumen no mostraron diferencias significativas entre tratamientos, la densidad del fruto
fue mayor en el tratamiento con bioestimulantes, lo
cual puede estar relacionado con un mayor contenido de sólidos solubles y mejor acumulación de materia seca, aspectos directamente vinculados a la firmeza, sabor y conservación del fruto. Estas características pueden estar promovidas por los metabolitos
activos de las microalgas, que estimulan procesos
como la fotosíntesis, el desarrollo radicular y la eficiencia en la asimilación de nutrientes, como ha sido
reportado por autores como Braun &amp; Colla (2023).
Varios estudios recientes respaldan el efecto positivo
de los bioestimulantes a base de microalgas en cultivos tropicales y hortícolas, observando mejoras tanto
en el vigor vegetativo como en la resistencia a enfermedades. Por ejemplo, Alfonso et al. (2024) reportaron que la aplicación foliar de microalgas en cultivos
tropicales incrementó significativamente la floración
y redujo la incidencia de virosis, mientras que PérezPLANTA No. 31, Agosto 2025

�Tabla 3. Sanidad del fruto en etapa postcosecha.
Síntoma

GEXUS

Testigo

Peciolo curvo y/o rallado

1.50

7.76

Piel de rana

0.00

0.00

Arrepollamiento del
cogollo; corte grillo

0.26

0.33

Flores y frutos aún sin cuajar sin presencia de hongos

0.00

0.00

Hongo en el follaje

0.00

0.00

Virosis

0.00

0.065

Madruga et al. (2020), destacaron su papel en la activación de rutas metabólicas asociadas al crecimiento
y defensa vegetal. Estos hallazgos refuerzan la hipótesis de que los metabolitos activos presentes en las
microalgas, como polisacáridos sulfatados, aminoácidos y compuestos fenólicos, estimulan rutas hormonales clave como las del ácido jasmónico y las auxinas, con efectos directos sobre la fisiología reproductiva y la integridad celular.
Conclusiones
Estos resultados evidencian que la aplicación de bioestimulantes a base de microalgas de GEXUS© contribuye significativamente a mejorar la eficiencia reproductiva, la sanidad vegetal y la calidad del fruto
en el cultivo de papaya, sin efectos negativos sobre la
productividad ni sobre los parámetros físicos del fruto. El aumento en el amarre de frutos, la reducción
de enfermedades y la mejora en la densidad pueden
atribuirse al efecto fisiológico de los metabolitos
bioactivos de las microalgas, que promueven rutas
hormonales clave, el fortalecimiento de paredes celulares y la activación de respuestas de defensa.
La consistencia de los resultados positivos en variables fisiológicas, sanitarias y físicas refuerza el potencial del uso de bioestimulantes de microalgas como
una estrategia sostenible para optimizar la producción y rentabilidad en frutales tropicales como la papaya.
PLANTA No. 31, Agosto 2025

Agradecimientos
Especial agradecimiento a la Doctora Vilma Castellanos Morales por su participación en la evaluación y
recopilación de datos.
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                <text>Planta es una revista de divulgación científica enfocada a la difusión del conocimiento botánico en todas sus ramas, especialmente, el que es generado en nuestra región. Incluye, entre otras, las secciones Editorial, Personajes de la botánica, Conoce tu flora, Flora amenazada, Etnobotánica, Flora urbana, Desarrollo sustentable y Agenda botánica; además de artículos de investigación inéditos o revisiones bibliográficas sobre una amplia variedad de tópicos relacionados con el estudio de las plantas. Inició en el 2005, su periodicidad es semestral y sigue activa.</text>
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              <text>El diseño y los contenidos de La hemeroteca Digital UANL están protegidos por la Ley de derechos de autor, Cap. III. De dominio público. Art. 152. Las obras del dominio público pueden ser libremente utilizadas por cualquier persona, con la sola restricción de respetar los derechos morales de los respectivos autores</text>
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